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利用CRISPR/Cas9和Cre/lox系统构建伪狂犬病毒双基因缺失活疫苗

摘要第1-7页
Abstract第7-8页
缩略语表(Abbreviation)第8-10页
第一章 文献综述第10-19页
   ·伪狂犬病毒第10-15页
     ·伪狂犬病毒的分子生物学及危害第10-11页
     ·伪狂犬病毒疫苗第11-14页
     ·目前伪狂犬病毒在我国流行趋势第14-15页
   ·CRISPR/Cas9基因编辑系统第15-17页
     ·CRISPR的发现和Cas家族的分型第15-16页
     ·CRISPR/Cas9系统的原理和应用第16-17页
   ·Cre/lox重组系统的特性及应用第17-19页
第二章 研究目的及意义第19-20页
第三章 材料和方法第20-34页
   ·材料第20-22页
     ·病毒和细胞第20页
     ·实验动物第20页
     ·主要酶和试剂第20页
     ·载体与质粒第20-21页
     ·培养基与抗生素及其制备第21页
     ·主要缓冲液、试剂及其制备第21页
     ·感受态细胞制备试剂第21-22页
     ·低熔点琼脂糖噬斑实验试剂制备第22页
   ·方法第22-34页
     ·限制性内切酶反应第22页
     ·PCR产物或酶切产物的电泳检测第22页
     ·PCR产物或酶切产物回收与纯化第22-23页
     ·氯化钙法制备大肠杆菌感受态细胞第23页
     ·转化连接产物或质粒载体第23-24页
     ·质粒载体的构建和鉴定第24-29页
       ·guide RNA的设计和表达载体构建和鉴定第24-25页
       ·体外扩增伪狂犬病毒gE和TK基因上下游同源臂第25-29页
     ·碱裂解法小量抽提质粒第29页
     ·微量中和试验(固定病毒-稀释血清法)第29-30页
     ·引物的设计合成第30-31页
     ·PRN-HNX重组毒的鉴定第31页
     ·细胞培养第31页
     ·细胞PEI转染第31页
     ·低熔点琼脂糖挑斑纯化第31-32页
     ·病毒的增殖、收获和保存第32页
     ·病毒基因组DNA提取第32-33页
     ·测定病毒半数组织感染量(TCID50)第33页
     ·小鼠动物实验第33页
     ·仔猪动物实验第33-34页
第四章 结果与分析第34-50页
   ·质粒载体的构建和鉴定第34-36页
     ·guide RNA的设计和表达载体构建和鉴定第34-35页
     ·TK、gE基因重组同源臂构建第35-36页
   ·利用CRISPR/Cas9系统构建PRV-ΔTK-ΔgE-mCherry-GFP重组毒第36-37页
   ·PRV-HNX-ΔTK-ΔgE-mCherry-GFP重组毒的纯化第37-38页
     ·PRV-HNX-ΔTK-ΔgE-mCherry-GFP重组毒的单细胞流式分选纯化第37-38页
     ·PRV-HNX-ΔTK-ΔgE-mCherry-GFP重组病毒的低熔点琼脂糖噬斑纯化第38页
   ·PRV-HNX-ΔTK-ΔgE-mCherry-GFP重组病毒的鉴定第38-39页
   ·利用Cre/lox系统敲除PRV-HNX-ΔTK-ΔgE-mCherry-GFP荧光基因第39-40页
   ·PRV-HNX-ΔTK-ΔgE的纯化和鉴定第40-41页
   ·小鼠动物实验第41-43页
     ·小鼠攻毒实验第41-42页
     ·小鼠免疫实验第42-43页
   ·仔猪动物实验第43-45页
   ·讨论第45-50页
     ·sgRNA的设计第45页
     ·同源重组片段的设计、扩增和融合第45-46页
     ·细胞转染和病毒感染条件的摸索第46页
     ·伪狂犬病毒TK基因抑制剂BVDU的使用第46页
     ·单细胞流式分选在重组病毒分选中的应用第46-47页
     ·CRISPR/Cas9编辑病毒基因组第47页
     ·病毒传染性疾病的防治和病毒的变异进化第47-48页
     ·CRISPR/Cas9和Cre/lox基因编辑系统在疫苗制备中的潜力第48页
     ·PRV基因缺失毒株的应用第48-50页
第五章 结论第50-51页
参考文献第51-57页
附录第57-58页
致谢第58页

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