| 摘要 | 第1-8页 |
| ABSTRACT | 第8-11页 |
| 目录 | 第11-13页 |
| 引言 | 第13-15页 |
| 第一章 文献综述 | 第15-23页 |
| 1 微卫星分子标记（SSR） | 第15-17页 |
| ·微卫星分子标记概述 | 第15-16页 |
| ·微卫星分子标记的研究方法 | 第16页 |
| ·微卫星分子标记在水产动物遗传育种中的应用 | 第16-17页 |
| 2 单核苷酸多态性（SNP） | 第17-18页 |
| ·SNP 的特点 | 第17-18页 |
| ·SNP 的检测手段 | 第18页 |
| ·SNP 在水产动物中的研究进展 | 第18页 |
| 3 补体的激活途径及其 C1q 家族的研究进展 | 第18-21页 |
| ·补体系统的组成及激活途径 | 第19页 |
| ·补体 C1q 家族简介 | 第19-20页 |
| ·补体 C1q 家族的研究进展 | 第20-21页 |
| 4 Cytohesin 家族的研究 | 第21-22页 |
| ·Cytohesins 的发现和分类 | 第21页 |
| ·Cytohesins 的功能 | 第21-22页 |
| 5 本论文的研究目的及意义 | 第22-23页 |
| 第二章 牙鲆抗淋巴囊肿病相关 SSR 标记的筛选与鉴定 | 第23-39页 |
| ·引言 | 第23页 |
| ·材料与方法 | 第23-34页 |
| ·样品采集 | 第23页 |
| ·微卫星引物 | 第23-32页 |
| ·基因组 DNA 制备 | 第32-33页 |
| ·BSA 分池 | 第33页 |
| ·PCR 扩增及聚丙烯酰胺凝胶电泳 | 第33页 |
| ·差异条带的个体验证 | 第33页 |
| ·差异条带的克隆与测序 | 第33-34页 |
| ·数据分析 | 第34页 |
| ·结果 | 第34-37页 |
| ·日本牙鲆群体抗淋巴囊肿病相关分子标记的验证 | 第34页 |
| ·BSA 分池及 PCR 扩增结果 | 第34-35页 |
| ·差异条带在个体中的扩增验证 | 第35-36页 |
| ·差异条带在抗、感个体中的扩大验证 | 第36-37页 |
| ·差异条带的克隆与测序 | 第37页 |
| ·讨论 | 第37-39页 |
| 第三章 牙鲆补体基因 C1q-like 3 的克隆与表达分析 | 第39-57页 |
| ·引言 | 第39页 |
| ·材料与方法 | 第39-48页 |
| ·实验牙鲆 | 第39页 |
| ·病原准备 | 第39-40页 |
| ·组织样本采样 | 第40页 |
| ·RNA 提取与 cDNA 合成 | 第40-41页 |
| ·引物设计和牙鲆 C1ql3 全长 cDNA 克隆 | 第41-47页 |
| ·序列分析 | 第47-48页 |
| ·荧光实时定量 PCR | 第48页 |
| ·结果 | 第48-55页 |
| ·牙鲆 C1ql3 基因序列分析 | 第48-51页 |
| ·C1ql3 同源性分析 | 第51-53页 |
| ·牙鲆 C1ql3 基因表达 | 第53-55页 |
| ·讨论 | 第55-57页 |
| 第四章 牙鲆 Cytohesin-1 基因克隆与 SNP 位点初步筛查 | 第57-66页 |
| ·引言 | 第57页 |
| ·材料与方法 | 第57-59页 |
| ·实验材料 | 第57-58页 |
| ·实验方法 | 第58-59页 |
| ·结果 | 第59-64页 |
| ·牙鲆 Cytohesin-1 基因的克隆及序列分析 | 第59-63页 |
| ·与抗鳗弧菌性状关联的 SNP 位点初步筛查 | 第63-64页 |
| ·讨论 | 第64-66页 |
| 总结与展望 | 第66-68页 |
| 参考文献 | 第68-78页 |
| 硕士期间已完成工作 | 第78-79页 |
| 致谢 | 第79页 |
