| 致谢 | 第1-5页 |
| 摘要 | 第5-6页 |
| Abstract | 第6-12页 |
| 第一章 绪论 | 第12-28页 |
| ·选题依据及意义 | 第12-14页 |
| ·低温对植物外观形态、生长发育的影响 | 第14页 |
| ·多胺对植物影响研究进展 | 第14-22页 |
| ·多胺的种类及分布 | 第14-16页 |
| ·多胺的生物合成 | 第16-17页 |
| ·多胺的降解 | 第17-19页 |
| ·多胺对细胞膜透性的影响 | 第19页 |
| ·多胺与植物的抗逆性 | 第19-20页 |
| ·多胺与生物大分子的相互作用 | 第20-22页 |
| ·关于NO | 第22-24页 |
| ·NO的化学特性及合成途径 | 第22页 |
| ·NO的生物功能 | 第22-24页 |
| ·热激蛋白的种类、结构及功能 | 第24-26页 |
| ·本文创新点 | 第26页 |
| ·研究方法 | 第26-28页 |
| 第二章 材料与试剂、设备 | 第28-32页 |
| ·材料 | 第28页 |
| ·试剂与设备 | 第28-32页 |
| ·试剂 | 第28-30页 |
| ·设备 | 第30-32页 |
| 第三章 亚精胺对低温胁迫下玉米幼苗生理特性的影响 | 第32-54页 |
| ·玉米种子的处理及玉米幼苗的培养 | 第32页 |
| ·测定方法 | 第32-34页 |
| ·超氧阴离子原位定位染色 | 第32页 |
| ·过氧化氢原位定位染色 | 第32-33页 |
| ·电导率的测定 | 第33页 |
| ·丙二醛测定 | 第33页 |
| ·叶绿素含量的测定 | 第33页 |
| ·可溶性糖含量的测定 | 第33页 |
| ·脯氨酸（Pro）含量的测定 | 第33页 |
| ·SOD活性测定 | 第33-34页 |
| ·POD活性测定 | 第34页 |
| ·CAT活性测定 | 第34页 |
| ·RT-PCR方法检测HSP70 和HSP90 mRNA的表达 | 第34-37页 |
| ·总RNA的提取 | 第34-35页 |
| ·琼脂糖凝胶电泳及总RNA质量检测 | 第35页 |
| ·RT-PCR | 第35-37页 |
| ·Western blot检测HSP70 和HSP90 表达 | 第37-38页 |
| ·玉米叶片总蛋白提取 | 第37页 |
| ·样品总蛋白定量 | 第37页 |
| ·SDS-PAGE | 第37-38页 |
| ·Western Blot分析 | 第38页 |
| ·数据分析 | 第38页 |
| ·结果与分析 | 第38-50页 |
| ·亚精胺对低温胁迫下玉米幼苗外部形态的影响 | 第38-39页 |
| ·亚精胺对低温胁迫下玉米幼苗叶片中过氧化氢和超氧阴离子积累的影响 | 第39-40页 |
| ·亚精胺对低温胁迫下玉米幼苗电导率的影响 | 第40-41页 |
| ·亚精胺对低温胁迫下玉米幼苗MDA含量的影响 | 第41-42页 |
| ·亚精胺对低温胁迫下玉米幼苗叶绿素含量的影响 | 第42-43页 |
| ·亚精胺对低温胁迫下玉米幼苗可溶性糖含量的影响 | 第43-44页 |
| ·亚精胺对低温胁迫下玉米幼苗脯氨酸含量的影响 | 第44-45页 |
| ·亚精胺对低温胁迫下玉米幼苗SOD活性的影响 | 第45页 |
| ·亚精胺对低温胁迫下玉米幼苗POD活性的影响 | 第45-46页 |
| ·亚精胺对低温胁迫下玉米幼苗CAT活性的影响 | 第46-47页 |
| ·亚精胺对低温胁迫下玉米幼苗HSP70 mRNA表达的影响 | 第47页 |
| ·亚精胺对低温胁迫下玉米幼苗HSP90mRNA表达的影响 | 第47-48页 |
| ·亚精胺对低温胁迫下玉米幼苗HSP70 蛋白表达的影响 | 第48-49页 |
| ·亚精胺对低温胁迫下玉米幼苗HSP90 蛋白表达的影响 | 第49-50页 |
| ·讨论 | 第50-54页 |
| 第四章 NO在亚精胺提高玉米抗寒性中的作用 | 第54-72页 |
| ·玉米幼苗培养与处理 | 第54页 |
| ·测定项目 | 第54-56页 |
| ·NO的测定 | 第54-55页 |
| ·电导率的测定 | 第55页 |
| ·丙二醛含量的测定 | 第55页 |
| ·叶绿素含量的测定 | 第55页 |
| ·可溶性多糖的测定 | 第55页 |
| ·脯氨酸含量测定 | 第55页 |
| ·SOD活性测定 | 第55页 |
| ·POD活性的测定 | 第55页 |
| ·CAT活性的测定 | 第55-56页 |
| ·RT-PCR方法检测HSP70 和HSP90 mRNA的表达 | 第56页 |
| ·总RNA提取 | 第56页 |
| ·琼脂糖凝胶电泳及总RNA检测 | 第56页 |
| ·RT-PCR | 第56页 |
| ·Western blot检测HSP70 和HSP90 表达 | 第56-57页 |
| ·玉米叶片总蛋白提取 | 第56页 |
| ·样品总蛋白定量 | 第56页 |
| ·SDS-PAGE | 第56页 |
| ·Western Blot分析 | 第56-57页 |
| ·结果与分析 | 第57-67页 |
| ·亚精胺和硝普钠处理后玉米叶片的荧光强度变化 | 第57-58页 |
| ·NO对低温胁迫下玉米幼苗电导率的影响 | 第58页 |
| ·NO对低温胁迫下玉米幼苗丙二醛含量的影响 | 第58-59页 |
| ·NO对低温胁迫下玉米幼苗叶绿素含量的影响 | 第59-60页 |
| ·NO对低温胁迫下玉米幼苗可溶性糖含量的影响 | 第60-61页 |
| ·NO对低温胁迫下玉米幼苗脯氨酸含量的影响 | 第61页 |
| ·NO对低温胁迫下玉米幼苗SOD活性的影响 | 第61-62页 |
| ·NO对低温胁迫下玉米幼苗POD活性的影响 | 第62-63页 |
| ·NO对低温胁迫下玉米幼苗CAT活性的影响 | 第63-64页 |
| ·NO对低温胁迫下玉米幼苗HSP70mRNA表达的影响 | 第64-65页 |
| ·NO对低温胁迫下玉米幼苗HSP90mRNA表达的影响 | 第65页 |
| ·NO对低温胁迫下玉米幼苗HSP70 蛋白表达的影响 | 第65-66页 |
| ·NO对低温胁迫下玉米幼苗HSP90 蛋白表达的影响 | 第66-67页 |
| ·讨论 | 第67-72页 |
| 结论 | 第72-74页 |
| 参考文献 | 第74-86页 |
| 作者简历 | 第86-90页 |
| 学位论文数据集 | 第90页 |
