符号说明 | 第1-10页 |
中文摘要 | 第10-11页 |
Abstract | 第11-13页 |
1 前言 | 第13-27页 |
·盐胁迫对植物生长发育的影响 | 第13-19页 |
·盐胁迫对植物的危害 | 第13-14页 |
·植物细胞中 Na~+、K~(+)稳态的建立 | 第14-17页 |
·植物细胞中 Na~+、K~(+)分布和生物功能 | 第15-16页 |
·Na~+的吸收和跨膜转运途径 | 第16页 |
·Na~+的外排和区域化 | 第16-17页 |
·K~(+)的吸收和跨膜转运途径 | 第17页 |
·离子平衡的重建和调节 | 第17-19页 |
·盐胁迫对植物光合作用的影响 | 第19页 |
·盐胁迫对光能吸收与转换的影响 | 第19页 |
·盐胁迫对光合同化物的影响 | 第19页 |
·活性氧的产生和清除系统 | 第19-26页 |
·叶绿体产生活性氧的途径 | 第20-22页 |
·活性氧的清除机制 | 第22-24页 |
·植物叶绿体中的 ROS 清除 | 第24-26页 |
·本实验的目的意义 | 第26-27页 |
2 材料与方法 | 第27-43页 |
·实验材料 | 第27-28页 |
·植物材料与处理 | 第27页 |
·菌株与质粒 | 第27页 |
·酶与各种生化试剂 | 第27-28页 |
·引物 | 第28页 |
·实验方法 | 第28-43页 |
·总 RNA 的提取 | 第28-29页 |
·反转录 cDNA 第一条链的合成 | 第29-30页 |
·番茄 LeENH1 基因的克隆 | 第30页 |
·Real-Time PCR 体系及反应条件 | 第30-31页 |
·植物基因组的提取 | 第31-32页 |
·植物基因组的纯化 | 第32页 |
·真核表达载体的构建 | 第32-35页 |
·正义表达载体构建 | 第32页 |
·连接反应 | 第32-33页 |
·大肠杆菌感受态细胞的制备 | 第33页 |
·转化及克隆筛选 | 第33-34页 |
·碱法小量提取质粒 DNA | 第34页 |
·质粒 DNA 的酶切鉴定 | 第34-35页 |
·回收 | 第35页 |
·DNA 序列测定 | 第35页 |
·根癌农杆菌 LBA4404 感受态细胞的制备与转化 | 第35-36页 |
·利用农杆菌介导转化烟草 | 第36页 |
·转基因烟草植株的 PCR 检测 | 第36-37页 |
·CTAB 微量法提取基因组 DNA | 第36-37页 |
·转基因植株的 PCR 筛选 | 第37页 |
·LeENH1 的叶绿体定位 | 第37-40页 |
·定位表达载体的构建 | 第37-38页 |
·原生质体的分离步骤 | 第38-39页 |
·转化原生质体的步骤 | 第39-40页 |
·转基因植物生理指标的测定 | 第40-43页 |
·转基因烟草的半定量 PCR 分析 | 第40页 |
·NaCl 处理下番茄 LeENH1 表达 qRT-PCR 分析 | 第40页 |
·番茄不同组织中 LeENH1 表达的 qRT-PCR 分析 | 第40页 |
·光合气体交换参数的测定 | 第40页 |
·叶绿素荧光参数的测定 | 第40-41页 |
·电解质外渗量、H_2O_2的测定 | 第41页 |
·膜脂过氧化程度分析 | 第41页 |
·tAPX 酶活性测定 | 第41页 |
·H_2O_2与 O_2~(·-)染色分析 | 第41-42页 |
·叶绿素含量的测定 | 第42页 |
·盐处理烟草种子发芽率和生长量测定 | 第42页 |
·透射电镜样品的制作与离子浓度的微区区分 | 第42页 |
·数据统计分析 | 第42-43页 |
3 结果与分析 | 第43-54页 |
·番茄 LeENH1 基因的分离 | 第43页 |
·LeENH1 全长 cDNA 分析 | 第43页 |
·LeENH1 的亚细胞定位 | 第43-44页 |
·LeENH1 在番茄中的表达分析 | 第44-45页 |
·LeENH1 基因在烟草中的遗传转化 | 第45-47页 |
·表达载体的构建 | 第45-46页 |
·转 LeENH1 基因植株的鉴定 | 第46-47页 |
·LeENH1 调节烟草盐胁迫耐性及其机理 | 第47-54页 |
4 讨论 | 第54-57页 |
·LeENH1 基因编码一个叶绿体蛋白与 SOS2 蛋白一起调节盐胁迫响应 | 第54页 |
·LeENH1 基因增强了植物对盐胁迫的耐性 | 第54-56页 |
·LeENH1 基因过表达降低了植物盐胁迫的产生的 ROS 水平 | 第56-57页 |
5 结论 | 第57-58页 |
参考文献 | 第58-66页 |
致谢 | 第66-67页 |
攻读学位期间发表论文情况 | 第67页 |