符号说明 | 第1-9页 |
摘要 | 第9-16页 |
Abstract | 第16-23页 |
前言 | 第23-29页 |
参考文献 | 第27-29页 |
第一部分 南蛇藤提取物抑制肝癌血管生成的体外研究 | 第29-58页 |
1 材料 | 第30-35页 |
·药材与细胞株 | 第30页 |
·主要试剂 | 第30-31页 |
·细胞免疫组化主要试剂配方 | 第31-32页 |
·Western blot主要试剂配方 | 第32-35页 |
2 方法 | 第35-43页 |
·药物准备 | 第35页 |
·细胞培养 | 第35页 |
·细胞毒性分析(MTT试验) | 第35-36页 |
·凋亡分析 | 第36页 |
·ELISA | 第36-37页 |
·细胞免疫组化 | 第37-38页 |
·免疫组化结果判定 | 第38页 |
·Western blot分析 | 第38-40页 |
·RT-PCR | 第40-43页 |
·HUVECs体外血管生成拟态实验 | 第43页 |
·统计学处理 | 第43页 |
3 结果 | 第43-53页 |
·COE化学成分分析及鉴定 | 第43-45页 |
·COE抑制Hepa1-6细胞的增殖 | 第45-47页 |
·COE诱导Hepa1-6细胞凋亡 | 第47-49页 |
·COE对HUVECs体外血管生成拟态的影响 | 第49-51页 |
·COE抑制Hepa1-6细胞中VEGF的表达水平 | 第51-53页 |
4 讨论 | 第53-55页 |
参考文献 | 第55-58页 |
第二部分 南蛇藤提取物促进树突状细胞成熟和功能的体外研究 | 第58-72页 |
1 材料 | 第58-60页 |
·实验动物 | 第58-59页 |
·主要检测试剂 | 第59页 |
·主要试剂配方 | 第59-60页 |
2 方法 | 第60-63页 |
·分离小鼠骨髓DCs | 第60-61页 |
·DCs培养及药物处理 | 第61页 |
·凋亡分析 | 第61-62页 |
·流式细胞检测分析 | 第62页 |
·混合淋巴细胞反应 | 第62页 |
·统计学处理 | 第62-63页 |
3 结果 | 第63-68页 |
·小鼠骨髓来源DCs的获得及鉴定 | 第63-64页 |
·COE促进DCs的分化和成熟 | 第64-66页 |
·COE增强DCs的趋化反应能力 | 第66页 |
·COE增强DCs活化T细胞的功能 | 第66-67页 |
·COE对DCs分泌细胞因子的影响 | 第67-68页 |
4 讨论 | 第68-70页 |
参考文献 | 第70-72页 |
第三部分 南蛇藤提取物抑制肝癌血管生成及增强树突状细胞功能的体内研究 | 第72-92页 |
1 材料 | 第72-76页 |
·药物 | 第72-73页 |
·主要试剂 | 第73页 |
·细胞株和实验动物 | 第73-74页 |
·主要试剂配方 | 第74-76页 |
2 方法 | 第76-80页 |
·造模与给药 | 第76页 |
·观察指标与测定 | 第76-77页 |
·肿瘤标本的常规病理学检查 | 第77页 |
·免疫组化检测VEGF和CD34表达 | 第77-78页 |
·免疫组化结果判定 | 第78页 |
·微血管密度计数 | 第78-79页 |
·小鼠脾脏淋巴细胞的分离 | 第79页 |
·外周血PBMC的分离 | 第79页 |
·流式细胞检测分析 | 第79-80页 |
·统计学方法 | 第80页 |
3 结果 | 第80-90页 |
·COE对Hepa1-6荷瘤小鼠抑瘤率的影响 | 第80-83页 |
·COE对荷瘤小鼠肝脾及胸腺指数的影响 | 第83页 |
·COE对移植瘤内肿瘤细胞凋亡的影响 | 第83-85页 |
·COE对肿瘤细胞VEGF表达的影响 | 第85-86页 |
·COE降低荷瘤小鼠血清VEGF表达量 | 第86-87页 |
·COE对瘤组织内微血管密度的影响 | 第87-88页 |
·COE对荷瘤小鼠成熟DCs数目的影响 | 第88-89页 |
·COE对荷瘤小鼠CD8~+T细胞的影响 | 第89-90页 |
4 讨论 | 第90-91页 |
参考文献 | 第91-92页 |
文献综述一 | 第92-102页 |
参考文献 | 第99-102页 |
文献综述二 | 第102-110页 |
参考文献 | 第107-110页 |
致谢 | 第110-112页 |
攻读博士学位期间以第一作者完成的论文 | 第112-113页 |
攻读博士学位期间获得的奖项 | 第113-114页 |