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南蛇藤提取物抑制肝癌血管生成及增强树突状细胞功能的研究

符号说明第1-9页
摘要第9-16页
Abstract第16-23页
前言第23-29页
 参考文献第27-29页
第一部分 南蛇藤提取物抑制肝癌血管生成的体外研究第29-58页
 1 材料第30-35页
   ·药材与细胞株第30页
   ·主要试剂第30-31页
   ·细胞免疫组化主要试剂配方第31-32页
   ·Western blot主要试剂配方第32-35页
 2 方法第35-43页
   ·药物准备第35页
   ·细胞培养第35页
   ·细胞毒性分析(MTT试验)第35-36页
   ·凋亡分析第36页
   ·ELISA第36-37页
   ·细胞免疫组化第37-38页
   ·免疫组化结果判定第38页
   ·Western blot分析第38-40页
   ·RT-PCR第40-43页
   ·HUVECs体外血管生成拟态实验第43页
   ·统计学处理第43页
 3 结果第43-53页
   ·COE化学成分分析及鉴定第43-45页
   ·COE抑制Hepa1-6细胞的增殖第45-47页
   ·COE诱导Hepa1-6细胞凋亡第47-49页
   ·COE对HUVECs体外血管生成拟态的影响第49-51页
   ·COE抑制Hepa1-6细胞中VEGF的表达水平第51-53页
 4 讨论第53-55页
 参考文献第55-58页
第二部分 南蛇藤提取物促进树突状细胞成熟和功能的体外研究第58-72页
 1 材料第58-60页
   ·实验动物第58-59页
   ·主要检测试剂第59页
   ·主要试剂配方第59-60页
 2 方法第60-63页
   ·分离小鼠骨髓DCs第60-61页
   ·DCs培养及药物处理第61页
   ·凋亡分析第61-62页
   ·流式细胞检测分析第62页
   ·混合淋巴细胞反应第62页
   ·统计学处理第62-63页
 3 结果第63-68页
   ·小鼠骨髓来源DCs的获得及鉴定第63-64页
   ·COE促进DCs的分化和成熟第64-66页
   ·COE增强DCs的趋化反应能力第66页
   ·COE增强DCs活化T细胞的功能第66-67页
   ·COE对DCs分泌细胞因子的影响第67-68页
 4 讨论第68-70页
 参考文献第70-72页
第三部分 南蛇藤提取物抑制肝癌血管生成及增强树突状细胞功能的体内研究第72-92页
 1 材料第72-76页
   ·药物第72-73页
   ·主要试剂第73页
   ·细胞株和实验动物第73-74页
   ·主要试剂配方第74-76页
 2 方法第76-80页
   ·造模与给药第76页
   ·观察指标与测定第76-77页
   ·肿瘤标本的常规病理学检查第77页
   ·免疫组化检测VEGF和CD34表达第77-78页
   ·免疫组化结果判定第78页
   ·微血管密度计数第78-79页
   ·小鼠脾脏淋巴细胞的分离第79页
   ·外周血PBMC的分离第79页
   ·流式细胞检测分析第79-80页
   ·统计学方法第80页
 3 结果第80-90页
   ·COE对Hepa1-6荷瘤小鼠抑瘤率的影响第80-83页
   ·COE对荷瘤小鼠肝脾及胸腺指数的影响第83页
   ·COE对移植瘤内肿瘤细胞凋亡的影响第83-85页
   ·COE对肿瘤细胞VEGF表达的影响第85-86页
   ·COE降低荷瘤小鼠血清VEGF表达量第86-87页
   ·COE对瘤组织内微血管密度的影响第87-88页
   ·COE对荷瘤小鼠成熟DCs数目的影响第88-89页
   ·COE对荷瘤小鼠CD8~+T细胞的影响第89-90页
 4 讨论第90-91页
 参考文献第91-92页
文献综述一第92-102页
 参考文献第99-102页
文献综述二第102-110页
 参考文献第107-110页
致谢第110-112页
攻读博士学位期间以第一作者完成的论文第112-113页
攻读博士学位期间获得的奖项第113-114页

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