| 摘要 | 第1-6页 |
| ABSTRACT | 第6-9页 |
| 目录 | 第9-12页 |
| 缩略词表 | 第12-13页 |
| 第一部分 实验研究 | 第13-59页 |
| 第一章 表皮特异性表达载体的构建 | 第13-35页 |
| 摘要 | 第13-14页 |
| 1.实验材料 | 第14-15页 |
| ·主要仪器设备 | 第14-15页 |
| ·实验试剂与耗材 | 第15页 |
| ·菌种和质粒 | 第15页 |
| 2.方法 | 第15-27页 |
| ·pKRT 14的克隆以及pMD19T-pKRT 14克隆载体的构建 | 第15-18页 |
| ·Tβ4基因的克隆以及pMD19T-Tβ4克隆载体的构建 | 第18-20页 |
| ·PolyA的克隆以及pMD19T-PolyA克隆载体的构建 | 第20-21页 |
| ·pOct-4的克隆以及pMD19T-Oct-4克隆载体的构建 | 第21-22页 |
| ·中间载体pMD19T-KTP的构建与鉴定 | 第22-23页 |
| ·中间载体pODsRed的构建与鉴定 | 第23-24页 |
| ·表皮特异性表达载体pODsRed-KTP和pCDsRed-KTP构建 | 第24-27页 |
| ·表皮特异性表达载体pODsRed-KTP与pCDsRed-KTP的线性化 | 第27页 |
| 3.结果 | 第27-31页 |
| ·PCR产物的序列分析 | 第27-31页 |
| ·表皮特异性表达载体pODsRed-KTP和pCDsRed-KTP的线性化 | 第31页 |
| 4.讨论 | 第31-32页 |
| 5.结论 | 第32-33页 |
| 参考文献 | 第33-35页 |
| 第二章 阿尔巴斯绒山羊耳尖皮肤成纤维细胞的转染与pKRT 14功能的验证 | 第35-49页 |
| 摘要 | 第35-36页 |
| 1.材料 | 第36-37页 |
| ·仪器设备 | 第36页 |
| ·主要试剂耗材 | 第36-37页 |
| ·细胞来源 | 第37页 |
| 2.方法 | 第37-42页 |
| ·阿尔巴斯白绒山羊耳尖皮肤成纤维细胞的解冻复苏与培养 | 第37页 |
| ·阿尔巴斯白绒山羊耳尖皮肤成纤维细胞的传代与冻存 | 第37页 |
| ·阿尔巴斯绒山羊细胞的转染与筛选 | 第37-39页 |
| ·Tβ4基因mRNA表达水平检测 | 第39-42页 |
| 3.结果 | 第42-46页 |
| ·细胞转染结果 | 第42-44页 |
| ·实时荧光定量PCR结果 | 第44-46页 |
| 4.讨论 | 第46-47页 |
| 5.结论 | 第47-48页 |
| 参考文献 | 第48-49页 |
| 第三章 转基因β4基因小鼠的制作与鉴定 | 第49-59页 |
| 摘要 | 第49-50页 |
| 1.材料与仪器 | 第50页 |
| ·仪器设备 | 第50页 |
| ·材料与试剂 | 第50页 |
| ·试验试剂 | 第50页 |
| ·试验动物 | 第50页 |
| 2.方法 | 第50-54页 |
| ·受精卵的采集 | 第51页 |
| ·结扎公鼠的的制备与假孕母鼠的获得 | 第51页 |
| ·原核注射 | 第51-52页 |
| ·受体母鼠的子宫移植 | 第52页 |
| ·转Tβ4基因首建鼠的PCR鉴定 | 第52-53页 |
| ·Tβ4基因mRNA水平过表达量的检测 | 第53-54页 |
| 3.结果 | 第54-56页 |
| ·转Tβ4基因小鼠的获得 | 第54页 |
| ·转Tβ4基因小鼠的PCR鉴定结果 | 第54-55页 |
| ·Tβ4基因mRNA水平过表达量的检测 | 第55-56页 |
| 4.讨论 | 第56-57页 |
| 5.结论 | 第57-58页 |
| 参考文献 | 第58-59页 |
| 第二部分 文献综述 | 第59-81页 |
| 一、毛囊的结构及功能 | 第59-62页 |
| 二、毛囊发育的分子基础 | 第62-71页 |
| 三、毛囊实验研究模型 | 第71-75页 |
| 参考文献 | 第75-81页 |
| 致谢 | 第81-83页 |
| 攻读学位期间发表旳论文 | 第83页 |
