| 摘要 | 第1-8页 |
| Abstract | 第8-9页 |
| 1 引言 | 第9-17页 |
| ·食品安全与兽药危害现状 | 第9页 |
| ·沙丁胺醇的危害及残留现状 | 第9-11页 |
| ·目前沙丁胺醇的检测方法、相关产品及存在的问题 | 第11-12页 |
| ·TRFIA技术介绍 | 第12-16页 |
| ·本研究的意义及主要内容 | 第16-17页 |
| 2 TRFIA竞争检测模式的建立 | 第17-42页 |
| ·材料与方法 | 第17-23页 |
| ·实验材料 | 第17-19页 |
| ·主要仪器设备 | 第17-18页 |
| ·主要试剂 | 第18-19页 |
| ·主要溶液配制 | 第19页 |
| ·实验流程 | 第19-20页 |
| ·实验方法 | 第20-23页 |
| ·SAL标准液的配制 | 第20页 |
| ·SAL-OVA完全抗原、单克隆抗体及羊抗小鼠IgG第二抗体的纯化及标记 | 第20页 |
| ·TRFIA竞争检测模式的建立及条件的优化 | 第20-23页 |
| ·包被抗原铕标一抗直接竞争法(模式Ⅰ)的建立 | 第20-21页 |
| ·包被一抗铕标抗原直接竞争法(模式Ⅱ)的建立 | 第21页 |
| ·包被二抗铕标抗原间接竞争法(模式Ⅲ)的建立 | 第21-22页 |
| ·包被抗原铕标二抗间接竞争法(模式Ⅳ)的建立 | 第22-23页 |
| ·TRFIA不同竞争模式的比较及最佳标准曲线的建立 | 第23页 |
| ·TRFIA方法与ELISA试剂盒有关参数的比较 | 第23页 |
| ·结果与分析 | 第23-37页 |
| ·包被抗原直接竞争TRFIA法(模式Ⅰ)的建立 | 第23-27页 |
| ·铕标记抗体的制备 | 第23-24页 |
| ·最佳包被浓度的确定 | 第24-25页 |
| ·最佳铕标稀释度的确定 | 第25页 |
| ·最佳反应时间的确定 | 第25-26页 |
| ·最佳单抗稀释液的确定 | 第26页 |
| ·最佳反应体系的确定 | 第26-27页 |
| ·小结 | 第27页 |
| ·包被一抗铕标抗原直接竞争TRFIA法(模式Ⅱ)的建立 | 第27-29页 |
| ·铕标记抗原的制各 | 第27页 |
| ·最佳一抗包被浓度的确定 | 第27-28页 |
| ·最佳铕标记抗原稀释度的确定 | 第28-29页 |
| ·小结 | 第29页 |
| ·包被二抗铕标抗原间接竞争TRFIA法(模式Ⅲ)的建立 | 第29-32页 |
| ·最佳抗沙丁胺醇单克隆抗体第二抗体包被浓度的确定 | 第29-30页 |
| ·最佳铕标抗原最佳稀释倍数的确定 | 第30页 |
| ·最佳抗沙丁胺醇单克隆抗体稀释倍数的确定 | 第30-31页 |
| ·最佳温育时间(反应步骤)的确定 | 第31-32页 |
| ·小结 | 第32页 |
| ·包被抗原铕标二抗间接竞争TRFIA法(模式Ⅳ)的建立 | 第32-35页 |
| ·铕标记二抗的制备 | 第32页 |
| ·最佳抗原包被浓度的确定 | 第32-33页 |
| ·最佳一抗稀释倍数的确定 | 第33页 |
| ·最佳铕标记二抗稀释倍数的确定 | 第33-34页 |
| ·最佳温育时间的确定 | 第34页 |
| ·小结 | 第34-35页 |
| ·四种检测模式的比较 | 第35-36页 |
| ·TRFIA最佳标准曲线的考核 | 第36-37页 |
| ·方法的灵敏度 | 第36页 |
| ·方法的精密度和特异性 | 第36页 |
| ·方法的加标回收率 | 第36-37页 |
| ·最佳条件下的TRFIA与ELISA方法的比较 | 第37页 |
| ·讨论 | 第37-42页 |
| ·抗原抗体的纯化及标记 | 第37-39页 |
| ·TRFIA竞争检测模式的建立及条件的优化 | 第39-41页 |
| ·TRFIA检测SAL标准曲线的建立 | 第41-42页 |
| ·TRFIA方法与ELISA试剂盒比较 | 第42页 |
| 3 结语与展望 | 第42-45页 |
| ·本实验初步结果 | 第42-43页 |
| ·本论文的创新之处 | 第43-44页 |
| ·本研究的可能用处及今后研究的问题 | 第44-45页 |
| 参考文献 | 第45-49页 |
| 英文缩写词表 | 第49-50页 |
| 致谢 | 第50页 |
