| 中文摘要 | 第1-8页 |
| ABSTRACT | 第8-14页 |
| 前言 | 第14-23页 |
| 第一章 人脐静脉内皮细胞的体外原代培养与鉴定 | 第23-32页 |
| 一.材料和方法 | 第23-26页 |
| 1.实验材料 | 第23-24页 |
| 2.实验方法 | 第24-26页 |
| ·培养瓶的预处理 | 第24-25页 |
| ·人脐静脉内皮细胞的分离与原代培养 | 第25页 |
| ·传代培养 | 第25-26页 |
| ·HUVEC的鉴定 | 第26页 |
| ·人脐静脉内皮细胞冻存和复苏 | 第26页 |
| 二.结果 | 第26-29页 |
| 1 脐静脉内皮细胞(HUVEC)的原代培养 | 第26-27页 |
| 2 传代培养的HUVEC | 第27-29页 |
| 3 HUVEC培养及鉴定结果 | 第29页 |
| 三.讨论 | 第29-32页 |
| 第二章 TNF-a刺激人脐静脉内皮细胞CF-6表达的作用机制及TZDs类药物对CF-6表达抑制的研究 | 第32-74页 |
| 一.材料与方法 | 第32-42页 |
| 1实验材料 | 第32-36页 |
| ·实验对象 | 第32-33页 |
| ·主要设备 | 第33页 |
| ·主要试剂 | 第33-34页 |
| ·主要实验用液体配方 | 第34-36页 |
| 2 实验方法 | 第36-42页 |
| ·实验一分组 | 第36页 |
| ·实验二分组 | 第36-37页 |
| ·实验三分组 | 第37页 |
| ·提取总RNA | 第37页 |
| ·实时定量PCR | 第37-38页 |
| ·逆转录聚合酶链式反应 | 第38-40页 |
| ·放射免疫分析(RIA) | 第40页 |
| ·蛋白质印迹分析 | 第40-41页 |
| ·流式细胞术分析 | 第41-42页 |
| ·NF-κB p65免疫组化分析 | 第42页 |
| ·统计学处理 | 第42页 |
| 二.实验结果 | 第42-68页 |
| 1 肿瘤坏死因子α(-TNF-α)促进CF6的表达和分泌 | 第42-54页 |
| ·HUVEC细胞经TNF-α刺激后CF6基因的表达增高 | 第42-45页 |
| ·HUVEC细胞经TNF-α刺激后CF6的分泌增加 | 第45-50页 |
| ·TNF-α刺激HUVEC细胞膜上CF6的表达增加 | 第50-51页 |
| ·TNF-α诱导HUVECs NF-κB p65核易位 | 第51-52页 |
| ·TNF-α诱导HUVEC NF-κB活化及NF-κB抑制蛋白Iκ Bα在细胞中的含量变化 | 第52-54页 |
| 2 曲格列酮抑制肿瘤坏死因子α(-TNF-α)促进的CF6表达和分泌 | 第54-68页 |
| ·曲格列酮可抑制HUVEC细胞经TNF-α刺激后引起CF6基因的表达增高 | 第54-55页 |
| ·曲格列酮抑制HUVEC细胞经TNF-α刺激后CF6的分泌增加 | 第55-64页 |
| ·TNF-α刺激HUVEC细胞膜上CF6的表达增加 | 第64-65页 |
| ·曲格列酮抑制TNF-α诱导的HUVECs NF-κB p65核易位 | 第65-66页 |
| ·TNF-α诱导HUVEC NF-κB活化及NF-κB抑制蛋白Iκ Bα在细胞中的含量变化 | 第66-68页 |
| 三.讨论 | 第68-72页 |
| 1 TNF-α是CF6释放的促进剂 | 第69-70页 |
| 2 TNF-α调节CF6的表达通过NF-κB信号通路 | 第70-71页 |
| 3 TNF-α调节CF6表达的意义 | 第71页 |
| 4 曲格列酮抑制TNF-α刺激的CF6的表达 | 第71-72页 |
| 四.结论 | 第72-74页 |
| 参考文献 | 第74-82页 |
| 英文缩写词表 | 第82-84页 |
| 文献综述 | 第84-95页 |
| 成果 | 第95-96页 |
| 致谢 | 第96-97页 |
