| 摘要 | 第1-5页 |
| Abstract | 第5-9页 |
| 第一章 文献综述 | 第9-25页 |
| 1.磁性复合微粒的研究现状 | 第9-18页 |
| ·磁性复合微粒的概念及组成 | 第9-11页 |
| ·磁性复合微粒的应用 | 第11-18页 |
| ·生物分子检测 | 第11-12页 |
| ·靶向给药及治疗 | 第12-14页 |
| ·细胞的分离 | 第14-16页 |
| ·生物医学诊断 | 第16-17页 |
| ·生物分子的分离纯化 | 第17-18页 |
| 2.mRNA分离纯化概述 | 第18-23页 |
| ·oligo(dT)—纤维素柱分离纯化mRNA | 第19-21页 |
| ·磁性复合微粒分离纯化mRNA | 第21-23页 |
| 论文的出发点和主要工作 | 第23-25页 |
| 第二章 功能化磁性复合微粒表面oligo(dT)_(20)的固定 | 第25-34页 |
| 1.功能化磁性复合微粒的制备 | 第26-27页 |
| ·试剂 | 第26页 |
| ·仪器 | 第26页 |
| ·方法 | 第26-27页 |
| ·磁性Fe_3O_4微粒的硅烷化修饰 | 第26页 |
| ·磁性微粒的PDITC化 | 第26-27页 |
| 2 oligo(dT)_(20)的固定 | 第27-28页 |
| ·试剂 | 第27页 |
| ·仪器 | 第27页 |
| ·方法 | 第27-28页 |
| ·oligo(dT)_(20)的偶联 | 第27-28页 |
| ·紫外分光光度计测定探针偶联效率 | 第28页 |
| ·琼脂糖电泳检测mRNA纯化质量 | 第28页 |
| 3 结果与讨论 | 第28-33页 |
| ·oligo(dT)_(20)偶联缓冲液的确定 | 第28-30页 |
| ·oligo(dT)_(20)偶联时间的确定 | 第30-31页 |
| ·磁性复合微粒封闭条件的确定 | 第31页 |
| ·磁性复合微粒偶联oligo(dT)_(20)的数量 | 第31-32页 |
| ·磁性复合微粒提取mRNA质量跟踪实验 | 第32-33页 |
| 本章小结 | 第33-34页 |
| 第三章 偶联oligo(dT)_(20)的磁性复合微粒从动植物组织总RNA中分离纯化mRNA | 第34-41页 |
| 1 材料与方法 | 第35-36页 |
| ·试剂 | 第35页 |
| ·仪器 | 第35页 |
| ·方法 | 第35-36页 |
| ·动、植物组织总RNA的提取 | 第35-36页 |
| ·mRNA纯化 | 第36页 |
| 2 结果与讨论 | 第36-40页 |
| ·Total RNA提取结果 | 第36-37页 |
| ·mRNA纯化结果 | 第37-40页 |
| ·动物组织mRNA纯化结果 | 第37-38页 |
| ·植物组织mRNA纯化结果 | 第38-40页 |
| 本章小结 | 第40-41页 |
| 第四章 纯化mRNA的质量验证 | 第41-45页 |
| 1 材料与方法 | 第41-42页 |
| ·试剂 | 第41-42页 |
| ·仪器 | 第42页 |
| ·方法 | 第42页 |
| ·大鼠cDNA的合成 | 第42页 |
| ·大鼠β-actin DNA序列的合成 | 第42页 |
| 2 结果与讨论 | 第42-44页 |
| 本章小结 | 第44-45页 |
| 第五章 功能化磁性复合微粒从组织中直接纯化mRNA | 第45-48页 |
| 1 材料与方法 | 第45-46页 |
| ·试剂 | 第45页 |
| ·仪器 | 第45页 |
| ·方法 | 第45-46页 |
| 2 结果与讨论 | 第46-47页 |
| 本章小结 | 第47-48页 |
| 第六章 链亲和素-金磁性微粒从总RNA中纯化mRNA初步探索 | 第48-52页 |
| 1 材料与方法 | 第48-50页 |
| ·试剂 | 第48-49页 |
| ·仪器 | 第49页 |
| ·方法 | 第49-50页 |
| ·Biotin-oligo(dT)_(25)的固定 | 第49页 |
| ·应用偶联oligo(dT)_(25)的链亲和素-金磁性微粒从总RNA中纯化mRNA | 第49-50页 |
| 2 结果与讨论 | 第50-51页 |
| 本章小结 | 第51-52页 |
| 参考文献 | 第52-60页 |
| 全文总结 | 第60-61页 |
| 致谢 | 第61页 |
