| 1 前言 | 第1-24页 |
| ·香蕉概述 | 第7-8页 |
| ·香蕉的分类 | 第7页 |
| ·香蕉的生物学特性 | 第7-8页 |
| ·香蕉的经济价值 | 第8页 |
| ·香蕉果实采后生理学及分子生物学研究现状 | 第8-13页 |
| ·香蕉采后生理学的研究 | 第8-9页 |
| ·香蕉采后分子生物学的研究 | 第9-13页 |
| ·采后果实乙烯生物合成相关基因的克隆 | 第9页 |
| ·采用差异筛选方法分离果实成熟相关基因 | 第9-10页 |
| ·重要基因的克隆与表达 | 第10-13页 |
| ·延长因子研究进展 | 第13-20页 |
| ·蛋白质合成延伸因子的生理作用 | 第14-17页 |
| ·蛋白质合成过程中延长因子的作用机制 | 第17-18页 |
| ·延伸因子的修饰和抑制 | 第18-20页 |
| ·eEF1的翻译后修饰 | 第18-19页 |
| ·eEF2的修饰和抑制 | 第19-20页 |
| ·植物蛋白质合成延伸因子的应用 | 第20-21页 |
| ·发现新型杀菌剂 | 第20页 |
| ·研究系统发育 | 第20页 |
| ·作为细胞生长发育状况的指标 | 第20-21页 |
| ·香蕉中延长因子的研究进展 | 第21页 |
| ·cDNA文库的筛选研究概况 | 第21-22页 |
| ·本研究的目的和意义 | 第22-23页 |
| ·技术路线 | 第23-24页 |
| 2 材料与方法 | 第24-33页 |
| ·实验材料、试剂与仪器 | 第24页 |
| ·材料 | 第24页 |
| ·试剂 | 第24页 |
| ·仪器设备 | 第24页 |
| ·实验方法 | 第24-33页 |
| ·cDNA文库的筛选 | 第24-30页 |
| ·引物的设计 | 第24页 |
| ·对cDNA文库的初步筛选 | 第24-26页 |
| ·库的稀释 | 第26页 |
| ·列PCR | 第26页 |
| ·孔PCR | 第26-27页 |
| ·孔稀释 | 第27页 |
| ·铺平板 | 第27-28页 |
| ·噬菌体斑的鉴定 | 第28页 |
| ·转入E.coli BM25.8 | 第28页 |
| ·质粒DNA的微量提取 | 第28-29页 |
| ·PCR鉴定 | 第29-30页 |
| ·序列测定 | 第30页 |
| ·基因表达特征分析 | 第30-33页 |
| ·RNA的提取 | 第30-31页 |
| ·cDNA第一链的合成 | 第31-32页 |
| ·PCR扩增 | 第32-33页 |
| ·引物设计 | 第32页 |
| ·反应体系及程序 | 第32-33页 |
| 3 结果与分析 | 第33-44页 |
| ·cDNA文库的筛选 | 第33-35页 |
| ·筛库结果 | 第33页 |
| ·序列测序结果 | 第33-35页 |
| ·生物信息学分析 | 第35-42页 |
| ·CDZ02与SSH片段BR-85进行同源性分析 | 第35-36页 |
| ·同源性分析 | 第36-38页 |
| ·用GENSCAN对序列进行ORF分析 | 第38-39页 |
| ·保守结构域分析 | 第39-41页 |
| ·香蕉与其他生物延长因子1A的氨基酸序列同源性比较 | 第41-42页 |
| ·基因登录Genebank | 第42页 |
| ·RNA的提取 | 第42-43页 |
| ·RT-PCR方法分析EF1A基因的表达 | 第43-44页 |
| ·EF1A基因在香蕉不同器官和果实成熟不同阶段的表达 | 第43页 |
| ·凝胶电泳图象的Scion image软件分析 | 第43-44页 |
| 4 讨论 | 第44-48页 |
| ·多基因编码香蕉延长因子1A | 第44-45页 |
| ·RT-PCR用于基因表达研究 | 第45-46页 |
| ·香蕉中延长因子1A(EF1A)的表达 | 第46-48页 |
| 5 结论 | 第48-49页 |
| 参考文献 | 第49-55页 |
| 附录 | 第55-61页 |
| 缩写词(ABBREVIATION) | 第55-56页 |
| 测序图 | 第56-61页 |
| 致谢 | 第61页 |