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趋化因子受体5在相关疾病中的作用机制研究

英文缩略词表第1-10页
中文摘要第10-14页
英文摘要第14-20页
引言第20-22页
第一部分 趋化因子受体5在1型糖尿病发生发展中的作用机制研究第22-77页
 前言第22-25页
 实验材料第25-30页
  1 实验动物第25页
  2 主要化学药品和生物试剂第25-27页
  3 主要试剂的配制第27-30页
 实验方法第30-40页
  1 糖尿病NOD鼠T细胞培养第30页
  2 CCR5在糖尿病NOD鼠T细胞的表达第30-31页
  3 CCR5-RNAi质粒的构建及筛选第31-32页
  4 DEAE-dextran法转染CCR5-RNAi质粒第32-33页
  5 流式细胞仪检测转染shRNAi质粒后CCR5含量的变化第33-34页
  6 流式细胞仪分选转染CCR5-shRNA-1质粒后的GFP~+和GFP~-T细胞第34页
  7 GFP~+和GFP~-T细胞RT-PCR检测CCR5的变化第34-36页
  8 GFP~+和GFP~-T细胞细胞周期的检测第36页
  9 GFP~+和GFP~-T细胞Th1和Th2细胞因子的检测第36-37页
  10 分别过继CCR5~+、CCR5~-和CCR5~(+/-)T细胞于NOD.scid鼠观察糖尿病发病情况第37-40页
 实验结果第40-58页
  1 糖尿病NOD鼠T细胞培养第40-41页
  2 CCR5在糖尿病NOD鼠T细胞的表达第41-42页
  3 CCR5-RNAi质粒的构建及筛选第42-43页
  4 DEAE-dextran法转染CCR5-RNAi质粒第43-44页
  5 流式细胞仪检测转染shRNAi质粒后CCR5含量的变化第44-46页
  6 流式细胞仪分选转染CCR5-shRNA-1质粒后的GFP~+和GFP~-T细胞第46-48页
  7 GFP~+和GFP~-T细胞RT-PCR检测CCR5的变化第48-49页
  8 GFP~+和GFP~-T细胞细胞周期的检测第49-50页
  9 转染CCR5-shRNA-1质粒对T细胞分泌细胞因子的影响第50-51页
  10 流式细胞仪分选CCR5~+和CCR5~-T细胞第51页
  11 CCR5~+T细胞对TIDM发病的影响第51-58页
 讨论第58-69页
  1 研究CCR5与1型糖尿病关系的必要性第58-60页
  2 应用RNAi技术研究CCR5与1型糖尿病的可行性第60-63页
  3 糖尿病NOD鼠T细胞CCR5 RNAi后的生物学变化第63-65页
  4 CCR5参与1型糖尿病病程的作用机理探讨第65-69页
 参考文献第69-77页
第二部分 趋化因子受体5在乳腺浸润性导管癌组织中的表达及意义第77-87页
 前言第77-78页
 试剂和仪器第78-80页
  1 主要试剂第78页
  2 主要试剂配制第78-79页
  3 主要仪器第79-80页
 实验方法第80-81页
  1 CCR5免疫组化的检测第80页
  2 ELISA检测相关趋化因子的含量第80-81页
 实验结果第81-83页
  1 CCR5在乳腺浸润性导管癌上的表达第81-82页
  2 乳腺浸润性导管癌患者血清中相关趋化因子的含量第82-83页
 讨论第83-85页
 参考文献第85-87页
第三部分 胸腺素原a的克隆表达和初步活性测定第87-98页
 前言第87-88页
 试剂和仪器第88-90页
  1 主要试剂第88页
  2 主要试剂配制第88-89页
  3 主要仪器第89-90页
 实验方法第90-94页
  1 ProTα基因的RT-PCR扩增第90页
  2 ProTαPCR产物胶回收第90-91页
  3 PCR产物及载体pBV220的双酶切第91页
  4 ProTα的在大肠杆菌中的诱导表达第91-93页
  5 rhProTα的活性测定第93-94页
 实验结果第94-96页
  1 RT-PCR扩增ProTα序列的电泳结果第94页
  2 ProTα在大肠杆菌中的表达第94-95页
  3 表达产物活性的初步测定第95-96页
 讨论第96-97页
 参考文献第97-98页
致谢第98-99页
附录一 文献综述(一)第99-119页
 文献综述(二)第110-119页
附录二 RNAi质粒测序报告第119-122页
附录三 博士就读期间发表的论文第122-126页

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