| 中文摘要 | 第1-9页 |
| 英文摘要 | 第9-11页 |
| 第一章 文献综述 | 第11-33页 |
| 1．1 植物纤维原料 | 第11-13页 |
| 1．1．1 植物纤维原料概述 | 第11-12页 |
| 1．1．2 植物纤维原料的开发利用 | 第12-13页 |
| 1．2 植物纤维原料预处理 | 第13-16页 |
| 1．2．1 物理处理 | 第14页 |
| 1．2．2 化学处理 | 第14-15页 |
| 1．2．3 生物处理 | 第15-16页 |
| 1．2．4 氨冷冻爆破处理 | 第16页 |
| 1．3 纤维素的降解 | 第16-19页 |
| 1．3．1 纤维素酶的性质及其工业应用 | 第16-17页 |
| 1．3．2 纤维素酶酶解机理 | 第17-19页 |
| 1．4 木聚糖酶的性质、生产及工业应用 | 第19-26页 |
| 1．4．1 木聚糖酶的性质 | 第19-22页 |
| 1．4．2 木聚糖酶的生产 | 第22-24页 |
| 1．4．3 木聚糖酶的工业应用 | 第24-26页 |
| 1．5 木聚糖酶酶解机制 | 第26-29页 |
| 1．5．1 木聚糖的结构 | 第26页 |
| 1．5．2 木聚糖水解酶系统 | 第26-28页 |
| 1．5．3 木聚糖酶对底物的适应性 | 第28页 |
| 1．5．4 木聚糖酶酶解作用机制 | 第28-29页 |
| 1．6 寡糖的性质、应用及其发展现状 | 第29-31页 |
| 1．6．1 概述 | 第29页 |
| 1．6．2 木寡糖及其制备 | 第29-30页 |
| 1．6．3 功能性寡糖的研究、开发及应用状况 | 第30-31页 |
| 1．7 本研究工作的思路 | 第31-33页 |
| 第二章 Thermoascus aurantiacus液体培养产木聚糖酶的研究 | 第33-44页 |
| 2．1 材料与方法 | 第33-38页 |
| 2．1．1 菌种及保藏 | 第33页 |
| 2．1．2 木聚糖 | 第33页 |
| 2．1．3 木糖渣 | 第33-34页 |
| 2．1．4 培养基 | 第34页 |
| 2．1．5 试剂 | 第34-35页 |
| 2．1．6 实验设备 | 第35页 |
| 2．1．7 木聚糖酶的制备 | 第35-36页 |
| 2．1．8 分析测定方法 | 第36-38页 |
| 2．2 结果与讨论 | 第38-43页 |
| 2．2．1 碳源浓度对产酶的影响 | 第38-39页 |
| 2．2．2 转速对产酶的影响 | 第39页 |
| 2．2．3 培养温度对液态培养产酶的影响 | 第39-40页 |
| 2．2．4 接种量对产酶的影响 | 第40-41页 |
| 2．2．5 pH值对产酶的影响 | 第41页 |
| 2．2．6 C/N对产酶的影响 | 第41-42页 |
| 2．2．7 Thermoascus aurantiacus液态培养产木聚糖酶的时间进程 | 第42-43页 |
| 2．3 小结 | 第43-44页 |
| 第三章 固态培养产木聚糖酶的研究 | 第44-52页 |
| 3．1 材料与方法 | 第44-46页 |
| 3．1．1 菌种及保藏 | 第44页 |
| 3．1．2 玉米芯 | 第44页 |
| 3．1．3 木聚糖、木糖渣 | 第44页 |
| 3．1．4 碱处理玉米芯 | 第44-45页 |
| 3．1．5 培养基 | 第45页 |
| 3．1．6 化学试剂 | 第45页 |
| 3．1．7 实验设备 | 第45页 |
| 3．1．8 木聚糖酶的制备 | 第45-46页 |
| 3．1．9 分析测定方法 | 第46页 |
| 3．2 实验结果与讨论 | 第46-51页 |
| 3．2．1 不同碳源对固态培养产酶的影响 | 第46-47页 |
| 3．2．2 不同氮源对固态培养产酶的影响 | 第47-48页 |
| 3．2．3 复合碳源中组分用量比对固态培养产酶的影响 | 第48-49页 |
| 3．2．4 固体产酶培养基中碳源与水的质量比对产酶的影响 | 第49页 |
| 3．2．5 接种方式对固态培养产木聚糖酶的影响 | 第49页 |
| 3．2．6 Thermoascus aurantiacus固态培养产木聚糖酶的时间进程 | 第49-51页 |
| 3．3 小结 | 第51-52页 |
| 第四章 T．aurantiacus木聚糖酶的酶学性质研究 | 第52-61页 |
| 4．1 材料与方法 | 第52-54页 |
| 4．1．1 酶制剂 | 第52页 |
| 4．1．2 木聚糖 | 第52页 |
| 4．1．3 主要试剂 | 第52页 |
| 4．1．4 实验设备 | 第52-53页 |
| 4．1．5 酶系各组分活力测定方法 | 第53-54页 |
| 4．2 结果与讨论 | 第54-60页 |
| 4．2．1 Thermoascus aurantiacus木聚糖酶的组成 | 第54-55页 |
| 4．2．2 酶作用的最适温度 | 第55-56页 |
| 4．2．3 酶的热稳定性 | 第56-57页 |
| 4．2．4 酶反应最适pH值 | 第57页 |
| 4．2．5 酶的pH稳定性 | 第57-58页 |
| 4．2．6 酶粉的存贮稳定性 | 第58页 |
| 4．2．7 金属离子对酶活的影响 | 第58-60页 |
| 4．3 小结 | 第60-61页 |
| 第五章 木聚糖酶和纤维素酶协同降解纤维原料的研究 | 第61-72页 |
| 5．1 材料与方法 | 第61-63页 |
| 5．1．1 玉米皮、木糖渣 | 第61页 |
| 5．1．2 纤维素酶 | 第61页 |
| 5．1．3 木聚糖酶 | 第61-62页 |
| 5．1．4 实验设备 | 第62页 |
| 5．1．5 植物纤维物料酶解 | 第62页 |
| 5．1．6 分析测定方法 | 第62-63页 |
| 5．2 结果与讨论 | 第63-71页 |
| 5．2．1 纤维素酶水解不同底物的比较 | 第63-64页 |
| 5．2．2 酶解时间 | 第64-65页 |
| 5．2．3 底物浓度的选择 | 第65-66页 |
| 5．2．4 添料方式对酶水解的影响 | 第66页 |
| 5．2．5 木聚糖酶用量对酶解得率的影响 | 第66-67页 |
| 5．2．6 纤维素酶用量对酶解得率的影响 | 第67-68页 |
| 5．2．7 木聚糖酶和纤维素酶的添加次序对酶解的影响 | 第68-69页 |
| 5．2．8 木聚糖酶和纤维素酶的用量 | 第69-71页 |
| 5．3 小结 | 第71-72页 |
| 第六章 木寡糖的酶法制备 | 第72-85页 |
| 6．1 材料与方法 | 第72-74页 |
| 6．1．1 玉米皮 | 第72页 |
| 6．1．2 木聚糖酶 | 第72-73页 |
| 6．1．3 主要化学试剂 | 第73页 |
| 6．1．4 实验设备 | 第73页 |
| 6．1．5 玉米皮预处理 | 第73-74页 |
| 6．1．6 半纤维素的提取 | 第74页 |
| 6．1．7 木寡糖的制备 | 第74页 |
| 6．1．8 分析方法 | 第74页 |
| 6．2 结果与讨论 | 第74-84页 |
| 6．2．1 pH值对半纤维素提取率的影响 | 第75页 |
| 6．2．2 NaOH溶液浓度对半纤维素提取率的影响 | 第75-76页 |
| 6．2．3 温度对半纤维素提取率的影响 | 第76页 |
| 6．2．4 提取时间对半纤维素提取率的影响 | 第76-77页 |
| 6．2．5 液固比对半纤维素提取率的影响 | 第77页 |
| 6．2．6 半纤维素提取正交试验因素的确定及最佳因素水平的选择 | 第77-78页 |
| 6．2．7 不同性质的半纤维素底物酶解制备木寡糖 | 第78-79页 |
| 6．2．8 木寡糖酶法制备工艺中底物浓度和酶解时间的选择 | 第79-81页 |
| 6．2．9 木聚糖酶用量的优化 | 第81-82页 |
| 6．2．10 木寡糖成本估算与投资收益分析 | 第82-84页 |
| 6．3 小结 | 第84-85页 |
| 第七章 结论与建议 | 第85-88页 |
| 7．1 结论 | 第85-87页 |
| 7．2 建议 | 第87-88页 |
| 参考文献 | 第88-91页 |
| 致谢 | 第91页 |
