| 摘要 | 第1-10页 |
| Abstract | 第10-12页 |
| 第一章 引言 | 第12-25页 |
| 1 莲子 | 第12-13页 |
| ·莲子的营养成分与保健功能 | 第12页 |
| ·莲子的生物学活性成分 | 第12-13页 |
| 2 低聚糖 | 第13-21页 |
| ·低聚糖来源 | 第13页 |
| ·低聚糖提取方法研究现状 | 第13-14页 |
| ·低聚糖分离纯化方法研究现状 | 第14-17页 |
| ·低聚糖结构分析研究现状 | 第17-20页 |
| ·低聚糖生物活性研究现状 | 第20-21页 |
| 3 双歧杆菌 | 第21-24页 |
| ·双歧杆菌糖代谢途径 | 第21-22页 |
| ·双歧杆菌生理功能 | 第22页 |
| ·影响双歧杆菌存活的主要因素 | 第22-23页 |
| ·双歧杆菌耐模拟消化道逆环境的研究 | 第23-24页 |
| 4 本课题的研究目的与意义 | 第24-25页 |
| 第二章 莲子低聚糖对双歧杆菌体外生长的促进作用 | 第25-35页 |
| 1 材料与方法 | 第25-30页 |
| ·试验材料与菌种 | 第25-26页 |
| ·试验仪器设备 | 第26页 |
| ·培养基 | 第26页 |
| ·试验方法 | 第26-30页 |
| 2 结果与分析 | 第30-34页 |
| ·低聚糖含量的测定 | 第30-31页 |
| ·蛋白质含量的测定 | 第31页 |
| ·总多酚含量的测定 | 第31页 |
| ·树脂的筛选 | 第31-32页 |
| ·菌体浓度的测定 | 第32页 |
| ·不同碳源对双歧杆菌增殖效应的影响 | 第32-33页 |
| ·不同浓度的莲子低聚糖对双歧杆菌增殖效应的研究 | 第33页 |
| ·双歧杆菌生长曲线的测定 | 第33-34页 |
| 3 结论 | 第34-35页 |
| 第三章 莲子低聚糖对双歧杆菌耐模拟胃肠道逆环境特性影响的研究 | 第35-45页 |
| 1 材料与方法 | 第35-38页 |
| ·试验材料与菌种 | 第35页 |
| ·试验仪器设备 | 第35页 |
| ·培养基 | 第35-36页 |
| ·试验方法 | 第36页 |
| ·蛋白酶活力测定 | 第36-37页 |
| ·无菌生理盐水配制方法 | 第37页 |
| ·菌种活化方法 | 第37页 |
| ·双歧杆菌的培养方法 | 第37页 |
| ·双歧杆菌活菌计数方法 | 第37页 |
| ·耐酸性试验 | 第37-38页 |
| ·耐胆汁酸盐试验 | 第38页 |
| ·模拟胃肠液耐受性试验 | 第38页 |
| ·数据统计分析 | 第38页 |
| 2 结果与分析 | 第38-44页 |
| ·蛋白酶液灭菌方法的确定 | 第38-39页 |
| ·不同碳源对双歧杆菌酸耐受性的研究 | 第39-41页 |
| ·不同碳源对双歧杆菌胆盐耐受性的研究 | 第41-43页 |
| ·模拟胃肠液耐受性试验 | 第43-44页 |
| 3 结论 | 第44-45页 |
| 第四章 响应面法优化双歧杆菌培养基配方的研究 | 第45-56页 |
| 1 材料与方法 | 第45-47页 |
| ·试验材料与菌种 | 第45页 |
| ·试验仪器设备 | 第45页 |
| ·培养基 | 第45页 |
| ·试验方法 | 第45-47页 |
| 2 结果与分析 | 第47-55页 |
| ·部分因子试验结果 | 第47-50页 |
| ·快速登高试验设计 | 第50页 |
| ·中心组合试验设计 | 第50-55页 |
| 3 结论 | 第55-56页 |
| 第五章 莲子低聚糖的分离及初步结构分析 | 第56-67页 |
| 1 材料与方法 | 第56-58页 |
| ·试验材料 | 第56页 |
| ·试验仪器设备 | 第56页 |
| ·试验方法 | 第56-58页 |
| 2 结果与分析 | 第58-65页 |
| ·DEAE 纤维素柱层析结果 | 第58-59页 |
| ·Sephadex G-15 凝胶柱层析结果 | 第59-60页 |
| ·Sephadex G-25 凝胶柱层析结果 | 第60-62页 |
| ·紫外吸收光谱分析结果 | 第62页 |
| ·莲子低聚糖的单糖组分分析 | 第62-64页 |
| ·红外吸收光谱分析结果 | 第64-65页 |
| 3 结论 | 第65-67页 |
| 结论与展望 | 第67-69页 |
| 参考文献 | 第69-77页 |
| 致谢 | 第77页 |