| 中文摘要 | 第1-5页 |
| 英文摘要 | 第5-9页 |
| 缩写表(中英文对照) | 第9-14页 |
| 第一章 蜘蛛毒素研究进展 | 第14-23页 |
| ·蜘蛛毒素及HWTX-Ⅰ简介 | 第14-19页 |
| ·多肽毒素的应用 | 第19-21页 |
| ·本研究的目的和意义 | 第21-23页 |
| 第二章 HWTX-Ⅰ的生物素标记及标记后结构与功能分析 | 第23-38页 |
| ·材料与仪器 | 第23-24页 |
| ·实验方法 | 第24-31页 |
| ·HWTX-Ⅰ的制备 | 第24-25页 |
| ·HWTX-Ⅰ的生物素标记及标记条件优化 | 第25-27页 |
| ·HWTX-Ⅰ的生物素标记物的分离纯化 | 第27-29页 |
| ·HWTX-Ⅰ的生物素标记物的生物活性检测 | 第29-31页 |
| ·HWTX-Ⅰ的生物素标记物的结构分析 | 第31页 |
| ·结果及讨论 | 第31-38页 |
| ·HWTX-Ⅰ的制备 | 第31-32页 |
| ·HWTX-Ⅰ的生物素标记条件优化结果 | 第32-34页 |
| ·HWTX-Ⅰ的生物素标记物分离纯化 | 第34-35页 |
| ·HWTX-Ⅰ的生物素标记物的生物活性检测 | 第35-37页 |
| ·HWTX-Ⅰ的生物素标记物的结构分析 | 第37-38页 |
| 第三章 HWTX-Ⅰ的细胞膜上受体分离与鉴定 | 第38-49页 |
| ·材料与仪器 | 第41-42页 |
| ·实验方法 | 第42-44页 |
| ·结果及讨论 | 第44-49页 |
| ·SDS-PAGE | 第44-46页 |
| ·质谱鉴定结果 | 第46页 |
| ·讨论 | 第46-49页 |
| 第四章 质膜蛋白质组学研究策略及研究进展 | 第49-60页 |
| ·细胞质膜的组成及结构 | 第50-51页 |
| ·细胞质膜的分离与纯化研究进展 | 第51-55页 |
| ·质膜蛋白质组研究主要技术 | 第55-58页 |
| ·基于凝胶系统的分离鉴定路线 | 第56-57页 |
| ·基于非凝胶系统的分离鉴定路线 | 第57-58页 |
| ·细胞质膜蛋白质组研究意义 | 第58-60页 |
| 第五章 过甲酸氧化辅助酶切法在质膜蛋白质组学中的应用 | 第60-81页 |
| ·材料与仪器 | 第61-63页 |
| ·细胞系 | 第61页 |
| ·试剂 | 第61-62页 |
| ·仪器设备 | 第62-63页 |
| ·实验方法 | 第63-69页 |
| ·细胞培养 | 第63页 |
| ·质膜纯化制备 | 第63-64页 |
| ·蛋白质免疫印迹分析 | 第64-66页 |
| ·过甲酸氧化条件的优化 | 第66页 |
| ·质膜的预酶解 | 第66页 |
| ·过甲酸氧化/胰蛋白酶酶解 | 第66-67页 |
| ·胰蛋白酶/胰凝乳蛋白酶酶解 | 第67页 |
| ·经典的60%甲醇/胰蛋白酶酶解 | 第67页 |
| ·优化的60%甲醇/胰蛋白酶酶解 | 第67-68页 |
| ·在线毛细管HPLC-MS/MS分析 | 第68页 |
| ·数据分析 | 第68-69页 |
| ·结果与讨论 | 第69-81页 |
| ·合适的过甲酸氧化反应条件能减小副反应 | 第69-70页 |
| ·质膜的纯化制备 | 第70-71页 |
| ·质膜蛋白质鉴定结果 | 第71-73页 |
| ·过甲酸氧化提高整合膜蛋白鉴定率 | 第73-75页 |
| ·蛋白质的分布 | 第75-77页 |
| ·过甲酸氧化辅助酶切对强疏水性整合膜蛋白的鉴定 | 第77-79页 |
| ·小结 | 第79-81页 |
| 参考文献 | 第81-95页 |
| 附表 | 第95-106页 |
| 论文发表情况 | 第106-107页 |
| 致谢 | 第107-108页 |