| 摘要 | 第1-9页 |
| ABSTRACT | 第9-12页 |
| 符号及缩略语 | 第12-14页 |
| 第一篇 文献综述 | 第14-40页 |
| 第一章 脱氧雪腐镰刀菌烯醇毒理学研究进展 | 第14-26页 |
| 1 DON的理化特性 | 第14-15页 |
| 2 DON的污染情况 | 第15-16页 |
| 3 DON的毒性作用 | 第16-21页 |
| ·动物毒性 | 第16-17页 |
| ·细胞毒性 | 第17-18页 |
| ·免疫毒性 | 第18-19页 |
| ·联合毒性 | 第19-21页 |
| 参考文献 | 第21-26页 |
| 第二章 脱氧雪腐镰刀菌烯醇与细胞凋亡研究进展 | 第26-40页 |
| 1 细胞凋亡 | 第26-27页 |
| ·细胞凋亡的形态学检测 | 第26-27页 |
| ·光学显微镜检测 | 第27页 |
| ·电子显微镜检测 | 第27页 |
| 2 细胞凋亡的线粒体信号转导路径 | 第27-29页 |
| ·细胞凋亡信号转导的一般特征 | 第27页 |
| ·线粒体跨膜电位的改变与细胞凋亡 | 第27-28页 |
| ·Cyt C与细胞凋亡 | 第28-29页 |
| 3 线粒体凋亡的主要调控基因 | 第29-33页 |
| ·ICE家族蛋白酶 | 第29-30页 |
| ·ICE/CED-3蛋白酶的调控 | 第30-31页 |
| ·Bcl-2家族在细胞凋亡中的作用 | 第31-33页 |
| 4 DON与细胞凋亡 | 第33-35页 |
| 参考文献 | 第35-40页 |
| 第二篇 试验研究 | 第40-80页 |
| 第三章 DON诱导HT-29细胞凋亡的形态学变化 | 第40-50页 |
| 1 材料和方法 | 第40-42页 |
| ·材料 | 第40-41页 |
| ·方法 | 第41-42页 |
| 2 结果 | 第42-46页 |
| ·光学显微镜下观察DON对HT-29细胞生长状态的影响 | 第42-43页 |
| ·透射电子显微镜下观察DON对HT-29细胞生长状态的影响 | 第43-46页 |
| 3 讨论 | 第46-48页 |
| 参考文献 | 第48-50页 |
| 第四章 DON诱导HT-29细胞凋亡的线粒体途径相关蛋白的表达 | 第50-66页 |
| 1 材料和方法 | 第50-54页 |
| ·材料 | 第50-51页 |
| ·方法 | 第51-54页 |
| ·数据处理 | 第54页 |
| 2 结果 | 第54-60页 |
| ·DON诱导HT-29细胞凋亡浓度梯度变化对Caspase-9、Caspase-3、Cyt C蛋白表达的影响 | 第54-57页 |
| ·DON诱导HT-29细胞凋亡时间梯度变化对Caspase-9、Caspase-3、Cyt C蛋白表达的影响 | 第57-60页 |
| 3 讨论 | 第60-64页 |
| 参考文献 | 第64-66页 |
| 第五章 DON诱导HT-29细胞凋亡对凋亡调控基因Bcl-2家族的影响 | 第66-80页 |
| 1 材料和方法 | 第66-68页 |
| ·材料 | 第66-67页 |
| ·方法 | 第67-68页 |
| 2 目的基因引物设计 | 第68-69页 |
| 3 实时荧光定量PCR | 第69-70页 |
| 4 统计学处理 | 第70页 |
| 5 结果 | 第70-74页 |
| ·实时荧光定量PCR熔解曲线 | 第70-72页 |
| ·DON对目的基因Bcl-2、Bax、Bid表达的影响 | 第72-74页 |
| 6 讨论 | 第74-77页 |
| 参考文献 | 第77-80页 |
| 全文总结 | 第80-82页 |
| 附录 | 第82-86页 |
| 致谢 | 第86页 |
