| 摘要 | 第8-10页 |
| ABSTRACT | 第10-12页 |
| 第一章 绪论 | 第13-37页 |
| 1 海藻以及鼠尾藻研究概况 | 第13-20页 |
| 1.1 海藻研究概况 | 第13页 |
| 1.2 鼠尾藻研究概况 | 第13-20页 |
| 1.2.1 鼠尾藻的组成成分 | 第13-17页 |
| 1.2.2 鼠尾藻的医用价值 | 第17-20页 |
| 2 多糖研究概况 | 第20-28页 |
| 2.1 多糖的提取 | 第21-23页 |
| 2.1.1 热水浸提法 | 第21页 |
| 2.1.2 微波辅助提取法 | 第21-22页 |
| 2.1.3 酶解法 | 第22页 |
| 2.1.4 超高压提取法 | 第22-23页 |
| 2.1.5 超声波辅助提取法 | 第23页 |
| 2.1.6 超临界流体萃取法 | 第23页 |
| 2.2 多糖的分离及纯化 | 第23-25页 |
| 2.2.1 多糖中蛋白质的去除 | 第24页 |
| 2.2.2 多糖中色素的去除 | 第24-25页 |
| 2.2.3 有机溶剂沉淀法 | 第25页 |
| 2.2.4 季铵盐沉淀法 | 第25页 |
| 2.2.5 柱层析法 | 第25页 |
| 2.3 多糖的结构检测 | 第25-26页 |
| 2.4 多糖的活性研究 | 第26-28页 |
| 2.4.1 抗氧化活性 | 第26页 |
| 2.4.2 抗肿瘤活性 | 第26-27页 |
| 2.4.3 免疫调节活性 | 第27-28页 |
| 2.4.4 其他活性 | 第28页 |
| 3 立题依据和主要研究内容 | 第28-30页 |
| 3.1 立题依据 | 第28页 |
| 3.2 主要研究内容 | 第28-30页 |
| 参考文献 | 第30-37页 |
| 第二章 鼠尾藻多糖的提取工艺 | 第37-49页 |
| 1 实验用材 | 第37页 |
| 1.1 实验材料 | 第37页 |
| 1.2 实验试剂 | 第37页 |
| 1.3 实验仪器 | 第37页 |
| 2 实验方法 | 第37-39页 |
| 2.1 多糖提取 | 第38页 |
| 2.2 单因素实验设计 | 第38页 |
| 2.3 热水提取鼠尾藻多糖的正交试验 | 第38-39页 |
| 3 结果与讨论 | 第39-45页 |
| 3.1 热水提取鼠尾藻多糖的单因素实验 | 第39-42页 |
| 3.1.1 提取时间对鼠尾藻多糖得率的影响 | 第39-40页 |
| 3.1.2 提取温度对鼠尾藻多糖得率的影响 | 第40-41页 |
| 3.1.3 提取次数鼠尾藻多糖得率的影响 | 第41页 |
| 3.1.4 提取料液比对多糖得率的影响 | 第41-42页 |
| 3.2 热水提取鼠尾藻多糖的正交试验 | 第42-45页 |
| 3.2.1 正交试验结果 | 第42-44页 |
| 3.2.2 验证实验 | 第44-45页 |
| 4 本章小结 | 第45-46页 |
| 参考文献 | 第46-49页 |
| 第三章 鼠尾藻多糖的分离纯化、理化性质及其结构的初步鉴定 | 第49-71页 |
| 1 实验用材 | 第50页 |
| 1.1 实验材料 | 第50页 |
| 1.2 实验试剂 | 第50页 |
| 1.3 实验仪器 | 第50页 |
| 2 实验方法 | 第50-55页 |
| 2.1 鼠尾藻多糖DEAE纤维素柱层析分离纯化 | 第50-51页 |
| 2.2 鼠尾藻多糖的理化性质测定 | 第51-54页 |
| 2.2.1 总糖含量测定 | 第51页 |
| 2.2.2 蛋白质含量的测定 | 第51-52页 |
| 2.2.3 多酚含量的测定 | 第52页 |
| 2.2.4 糖醛酸含量的测定 | 第52-53页 |
| 2.2.5 硫酸基含量的测定 | 第53页 |
| 2.2.6 纯度和相对分子量的测定 | 第53-54页 |
| 2.3 鼠尾藻多糖结构的初步鉴定 | 第54-55页 |
| 2.3.1 鼠尾藻多糖的单糖组成 | 第54-55页 |
| 2.3.2 鼠尾藻多糖的红外光谱分析 | 第55页 |
| 3 结果与讨论 | 第55-67页 |
| 3.1 鼠尾藻多糖DEAE纤维素柱层析分离纯化 | 第55-56页 |
| 3.2 鼠尾藻多糖的基本理化性质 | 第56-59页 |
| 3.2.1 鼠尾藻多糖的化学组成分析 | 第56页 |
| 3.2.2 鼠尾藻多糖的纯度和分子量鉴定 | 第56-59页 |
| 3.3 鼠尾藻多糖的结构分析 | 第59-67页 |
| 3.3.1 鼠尾藻多糖的单糖组成分析 | 第59-64页 |
| 3.3.2 鼠尾藻多糖的红外光谱分析 | 第64-67页 |
| 4 本章小结 | 第67-68页 |
| 参考文献 | 第68-71页 |
| 第四章 鼠尾藻多糖的抗氧化活性及体外免疫活性 | 第71-87页 |
| 1 实验用材 | 第71-72页 |
| 1.1 实验材料 | 第71-72页 |
| 1.2 实验试剂 | 第72页 |
| 1.3 实验仪器 | 第72页 |
| 2 实验方法 | 第72-76页 |
| 2.1 鼠尾藻多糖体外抗氧化活性研究 | 第72-74页 |
| 2.1.1 总还原力测定 | 第72-73页 |
| 2.1.2 清除DPPH自由基的活性测定 | 第73页 |
| 2.1.3 超氧阴离子自由基清除活性的测定 | 第73-74页 |
| 2.1.4 ABTS自由基清除活性的测定 | 第74页 |
| 2.1.5 金属离子螯合能力的测定 | 第74页 |
| 2.2 鼠尾藻多糖体外免疫活性研究 | 第74-76页 |
| 2.2.1 小鼠腹腔巨噬细胞RAW264.7的培养 | 第74-75页 |
| 2.2.2 鼠尾藻多糖对RAW264.7细胞的增殖影响 | 第75页 |
| 2.2.3 鼠尾藻多糖对RAW264.7细胞吞噬中性红的影响 | 第75-76页 |
| 2.2.4 鼠尾藻多糖对酸性磷酸梅活性的影响 | 第76页 |
| 3 结果与讨论 | 第76-83页 |
| 3.1 鼠尾藻多糖体外抗氧化活性 | 第76-80页 |
| 3.1.1 鼠尾藻多糖的总还原力 | 第76-77页 |
| 3.1.2 鼠尾藻多糖对DPPH自由基的清除活性 | 第77-78页 |
| 3.1.3 鼠尾藻多糖对超氧阴离子的清除活性 | 第78-79页 |
| 3.1.4 鼠尾藻多糖对ABTS自由基的清除活性 | 第79页 |
| 3.1.5 鼠尾藻多糖对金属离子的螯合能力 | 第79-80页 |
| 3.2 鼠尾藻多糖体外免疫活性活性 | 第80-83页 |
| 3.2.1 鼠尾藻多糖对RAW264.7细胞的增殖影响 | 第80-81页 |
| 3.2.2 鼠尾藻多糖对RAW264.7细胞吞噬中性红的影响 | 第81-82页 |
| 3.2.3 鼠尾藻多糖对酸性磷酸梅活性的影响 | 第82-83页 |
| 4 本章小结 | 第83-84页 |
| 参考文献 | 第84-87页 |
| 第五章 鼠尾藻多糖的体外模拟口腔及胃肠液消化 | 第87-99页 |
| 1 实验用材 | 第87-88页 |
| 1.1 实验材料 | 第87页 |
| 1.2 实验试剂 | 第87页 |
| 1.3 实验仪器 | 第87-88页 |
| 2 实验方法 | 第88-90页 |
| 2.1 模拟口腔消化鼠尾藻多糖 | 第88-89页 |
| 2.2 模拟胃和小肠消化鼠尾藻多糖 | 第89-90页 |
| 3 结果与讨论 | 第90-94页 |
| 3.1 模拟口腔消化鼠尾藻多糖的结果 | 第90-92页 |
| 3.1.1 唾液消化后鼠尾藻多糖分子量的测定 | 第90-91页 |
| 3.1.2 唾液消化后还原糖含量的测定 | 第91页 |
| 3.1.3 唾液消化产物中游离单糖的检测 | 第91-92页 |
| 3.2 模拟胃肠液消化鼠尾藻多糖 | 第92-94页 |
| 3.2.1 胃肠液消化后鼠尾藻多糖分子量的测定 | 第92-93页 |
| 3.2.2 胃液及胃肠液消化后还原糖含置的测定 | 第93页 |
| 3.2.3 胃液及胃肠液消化产物中游离单糖的检测 | 第93-94页 |
| 4 本章小结 | 第94-95页 |
| 参考文献 | 第95-99页 |
| 全文总结 | 第99-101页 |
| 致谢 | 第101页 |
