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鼠尾藻多糖的提取、分离纯化、结构鉴定及生物活性研究

摘要第8-10页
ABSTRACT第10-12页
第一章 绪论第13-37页
    1 海藻以及鼠尾藻研究概况第13-20页
        1.1 海藻研究概况第13页
        1.2 鼠尾藻研究概况第13-20页
            1.2.1 鼠尾藻的组成成分第13-17页
            1.2.2 鼠尾藻的医用价值第17-20页
    2 多糖研究概况第20-28页
        2.1 多糖的提取第21-23页
            2.1.1 热水浸提法第21页
            2.1.2 微波辅助提取法第21-22页
            2.1.3 酶解法第22页
            2.1.4 超高压提取法第22-23页
            2.1.5 超声波辅助提取法第23页
            2.1.6 超临界流体萃取法第23页
        2.2 多糖的分离及纯化第23-25页
            2.2.1 多糖中蛋白质的去除第24页
            2.2.2 多糖中色素的去除第24-25页
            2.2.3 有机溶剂沉淀法第25页
            2.2.4 季铵盐沉淀法第25页
            2.2.5 柱层析法第25页
        2.3 多糖的结构检测第25-26页
        2.4 多糖的活性研究第26-28页
            2.4.1 抗氧化活性第26页
            2.4.2 抗肿瘤活性第26-27页
            2.4.3 免疫调节活性第27-28页
            2.4.4 其他活性第28页
    3 立题依据和主要研究内容第28-30页
        3.1 立题依据第28页
        3.2 主要研究内容第28-30页
    参考文献第30-37页
第二章 鼠尾藻多糖的提取工艺第37-49页
    1 实验用材第37页
        1.1 实验材料第37页
        1.2 实验试剂第37页
        1.3 实验仪器第37页
    2 实验方法第37-39页
        2.1 多糖提取第38页
        2.2 单因素实验设计第38页
        2.3 热水提取鼠尾藻多糖的正交试验第38-39页
    3 结果与讨论第39-45页
        3.1 热水提取鼠尾藻多糖的单因素实验第39-42页
            3.1.1 提取时间对鼠尾藻多糖得率的影响第39-40页
            3.1.2 提取温度对鼠尾藻多糖得率的影响第40-41页
            3.1.3 提取次数鼠尾藻多糖得率的影响第41页
            3.1.4 提取料液比对多糖得率的影响第41-42页
        3.2 热水提取鼠尾藻多糖的正交试验第42-45页
            3.2.1 正交试验结果第42-44页
            3.2.2 验证实验第44-45页
    4 本章小结第45-46页
    参考文献第46-49页
第三章 鼠尾藻多糖的分离纯化、理化性质及其结构的初步鉴定第49-71页
    1 实验用材第50页
        1.1 实验材料第50页
        1.2 实验试剂第50页
        1.3 实验仪器第50页
    2 实验方法第50-55页
        2.1 鼠尾藻多糖DEAE纤维素柱层析分离纯化第50-51页
        2.2 鼠尾藻多糖的理化性质测定第51-54页
            2.2.1 总糖含量测定第51页
            2.2.2 蛋白质含量的测定第51-52页
            2.2.3 多酚含量的测定第52页
            2.2.4 糖醛酸含量的测定第52-53页
            2.2.5 硫酸基含量的测定第53页
            2.2.6 纯度和相对分子量的测定第53-54页
        2.3 鼠尾藻多糖结构的初步鉴定第54-55页
            2.3.1 鼠尾藻多糖的单糖组成第54-55页
            2.3.2 鼠尾藻多糖的红外光谱分析第55页
    3 结果与讨论第55-67页
        3.1 鼠尾藻多糖DEAE纤维素柱层析分离纯化第55-56页
        3.2 鼠尾藻多糖的基本理化性质第56-59页
            3.2.1 鼠尾藻多糖的化学组成分析第56页
            3.2.2 鼠尾藻多糖的纯度和分子量鉴定第56-59页
        3.3 鼠尾藻多糖的结构分析第59-67页
            3.3.1 鼠尾藻多糖的单糖组成分析第59-64页
            3.3.2 鼠尾藻多糖的红外光谱分析第64-67页
    4 本章小结第67-68页
    参考文献第68-71页
第四章 鼠尾藻多糖的抗氧化活性及体外免疫活性第71-87页
    1 实验用材第71-72页
        1.1 实验材料第71-72页
        1.2 实验试剂第72页
        1.3 实验仪器第72页
    2 实验方法第72-76页
        2.1 鼠尾藻多糖体外抗氧化活性研究第72-74页
            2.1.1 总还原力测定第72-73页
            2.1.2 清除DPPH自由基的活性测定第73页
            2.1.3 超氧阴离子自由基清除活性的测定第73-74页
            2.1.4 ABTS自由基清除活性的测定第74页
            2.1.5 金属离子螯合能力的测定第74页
        2.2 鼠尾藻多糖体外免疫活性研究第74-76页
            2.2.1 小鼠腹腔巨噬细胞RAW264.7的培养第74-75页
            2.2.2 鼠尾藻多糖对RAW264.7细胞的增殖影响第75页
            2.2.3 鼠尾藻多糖对RAW264.7细胞吞噬中性红的影响第75-76页
            2.2.4 鼠尾藻多糖对酸性磷酸梅活性的影响第76页
    3 结果与讨论第76-83页
        3.1 鼠尾藻多糖体外抗氧化活性第76-80页
            3.1.1 鼠尾藻多糖的总还原力第76-77页
            3.1.2 鼠尾藻多糖对DPPH自由基的清除活性第77-78页
            3.1.3 鼠尾藻多糖对超氧阴离子的清除活性第78-79页
            3.1.4 鼠尾藻多糖对ABTS自由基的清除活性第79页
            3.1.5 鼠尾藻多糖对金属离子的螯合能力第79-80页
        3.2 鼠尾藻多糖体外免疫活性活性第80-83页
            3.2.1 鼠尾藻多糖对RAW264.7细胞的增殖影响第80-81页
            3.2.2 鼠尾藻多糖对RAW264.7细胞吞噬中性红的影响第81-82页
            3.2.3 鼠尾藻多糖对酸性磷酸梅活性的影响第82-83页
    4 本章小结第83-84页
    参考文献第84-87页
第五章 鼠尾藻多糖的体外模拟口腔及胃肠液消化第87-99页
    1 实验用材第87-88页
        1.1 实验材料第87页
        1.2 实验试剂第87页
        1.3 实验仪器第87-88页
    2 实验方法第88-90页
        2.1 模拟口腔消化鼠尾藻多糖第88-89页
        2.2 模拟胃和小肠消化鼠尾藻多糖第89-90页
    3 结果与讨论第90-94页
        3.1 模拟口腔消化鼠尾藻多糖的结果第90-92页
            3.1.1 唾液消化后鼠尾藻多糖分子量的测定第90-91页
            3.1.2 唾液消化后还原糖含量的测定第91页
            3.1.3 唾液消化产物中游离单糖的检测第91-92页
        3.2 模拟胃肠液消化鼠尾藻多糖第92-94页
            3.2.1 胃肠液消化后鼠尾藻多糖分子量的测定第92-93页
            3.2.2 胃液及胃肠液消化后还原糖含置的测定第93页
            3.2.3 胃液及胃肠液消化产物中游离单糖的检测第93-94页
    4 本章小结第94-95页
    参考文献第95-99页
全文总结第99-101页
致谢第101页

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