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γ-内脏平滑肌型actin基因的可变剪接对湖羊肌肉发育和肉质性状的调控作用

摘要第4-6页
ABSTRACT第6-8页
英文缩写说明第9-13页
第一章 前言第13-21页
    1.1 骨骼肌的形成及发育第14页
    1.2 骨骼肌纤维与肌肉发育及肉质品质的关系第14-16页
        1.2.1 骨骼肌纤维的形成第14-15页
        1.2.2 肌纤维的类型第15页
        1.2.3 肌纤维与肌肉发育的关系第15-16页
        1.2.4 肌纤维与肉质的关系第16页
    1.3 肌动蛋白与肌肉发育及肉质品质的关系第16-19页
        1.3.1 肌动蛋白的构成第16-17页
        1.3.2 肌动蛋白的类型第17页
        1.3.3 肌动蛋白与肌肉发育的关系第17-18页
        1.3.4 肌动蛋白与肉质品质的关系第18-19页
    1.4 研究的目的与意义第19-21页
第二章 雄性纯种湖羊、杜泊×湖羊杂交羊肌纤维特性研究第21-36页
    2.1 试验样品第21页
    2.2 试验器材及试剂第21-22页
        2.2.1 试验器材第21-22页
        2.2.2 主要试验试剂第22页
    2.3 试验方法第22-24页
        2.3.1 石蜡包埋切片HE染色第22-23页
        2.3.2 冰冻切片油红O染色第23-24页
        2.3.3 数据统计第24页
    2.4 结果与分析第24-32页
        2.4.1 HE染色结果第24-28页
        2.4.2 油红O染色结果第28-32页
    2.5 讨论第32-36页
        2.5.1 湖羊及杜泊×湖羊杂交F1代羊的体型外貌差异第32-33页
        2.5.2 肌纤维特性与体重和肉质第33-34页
        2.5.3 肌纤维特性、肌肉脂肪与肉质第34-35页
        2.5.4 肌肉脂肪与体重和肉质第35-36页
第三章 湖羊、杜泊×湖羊肌肉组织中MYL3、ACTG2基因及其5'UTR可变剪接的表达与分析第36-57页
    3.1 试验样品第36页
    3.2 主要仪器与试剂第36-37页
        3.2.1 主要仪器设备第36页
        3.2.2 主要试剂第36-37页
        3.2.3 常用相关试剂配制第37页
    3.3 试验方法第37-40页
        3.3.1 试验样品总RNA的提取及质检第37-39页
        3.3.2 实时荧光定量PCR验证基因表达差异第39-40页
        3.3.3 MYL3基因、ACTG2基因在健康组织中的表达谱及信号通路分析第40页
    3.4 结果与分析第40-52页
        3.4.1 雄性湖羊、雄性杜泊×湖羊杂交羊不同肌肉组织MYL3基因表达分析第40-42页
        3.4.2 雄性湖羊、雄性杜泊×湖羊杂交羊不同肌肉组织ACTG2基因及其可变剪接表达分析第42-52页
    3.5 讨论第52-57页
        3.5.1 实时荧光定量PCR的选择第52-53页
        3.5.2 信号通路中差异表达基因的定量及影响肌肉发育与肉质的因素第53-57页
第四章 湖羊ACTG2基因5' UTR区UTR不同剪接双荧光素酶报告基因的构建及细胞特异性验证第57-73页
    4.1 试验样品与设备第58-60页
        4.1.1 试验样品第58页
        4.1.2 主要的试验试剂第58-59页
        4.1.3 主要仪器与设备第59-60页
    4.2 试验方法第60-69页
        4.2.1 ACTG2基因5'UTR可变剪接引物设计与合成第60-61页
        4.2.2 ACTG2 5'UTR不同剪接序列克隆及鉴定第61-66页
        4.2.3 ACTG2 5' UTR不同序列启动子活性分析及细胞特异性验证第66-68页
        4.2.4 荧光定量PCR验证第68-69页
    4.3 结果与分析第69-71页
        4.3.1 双荧光素酶报告基因检测活性第69-70页
        4.3.2 荧光定量PCR验证结果第70-71页
    4.4 讨论第71-73页
第五章 结论第73-74页
创新点第74-75页
展望第75-76页
参考文献第76-87页
致谢第87-88页
攻读学位期间发表的学术论文第88-90页

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