| 摘要 | 第3-4页 |
| abstract | 第4页 |
| 第1章 引言 | 第9-19页 |
| 1.1 MTA的研究进展 | 第9-11页 |
| 1.1.1 MTA的理化性质 | 第9页 |
| 1.1.2 MTA的生物学特性 | 第9-11页 |
| 1.2 Notch信号通路 | 第11-14页 |
| 1.2.1 Notch受体与配体 | 第11-12页 |
| 1.2.2 Notch信号通路的功能 | 第12-14页 |
| 1.3 细胞自噬 | 第14-19页 |
| 1.3.1 细胞自噬简介 | 第15-17页 |
| 1.3.2 细胞自噬的生物学功能 | 第17-18页 |
| 1.3.3 细胞自噬与Notch信号通路 | 第18-19页 |
| 第2章 材料与方法 | 第19-32页 |
| 2.1 实验试剂及材料 | 第19-24页 |
| 2.1.1 生物组织、细胞培养相关实验材料与试剂 | 第19-20页 |
| 2.1.2 分子生物学实验试剂与材料 | 第20页 |
| 2.1.3 蛋白免疫印迹关实验材料试剂 | 第20-23页 |
| 2.1.4 实验仪器和设备 | 第23-24页 |
| 2.2 实验方法 | 第24-32页 |
| 2.2.1 细胞分离和材料准备 | 第24-25页 |
| 2.2.2 细胞生物学实验 | 第25-26页 |
| 2.2.3 分子生物学实验 | 第26-32页 |
| 第3章 MTA抑制自噬流激活Notch通路促进hDPCs生长 | 第32-46页 |
| 3.1 本章引论 | 第32页 |
| 3.2 人牙髓细胞的分离和鉴定 | 第32-33页 |
| 3.3 MTA促进人牙髓细胞生长 | 第33-36页 |
| 3.3.1 MTA的细胞毒性 | 第34-35页 |
| 3.3.2 MTA缩短牙髓细胞到达生长平台期的时间 | 第35-36页 |
| 3.4 MTA促进牙髓细胞钙化结节生成 | 第36-37页 |
| 3.5 MTA下调制ALP和Runx2基因表达 | 第37-38页 |
| 3.6 MTA激活Notch1-Hes1信号通路 | 第38-40页 |
| 3.6.1 MTA上调Hes1和Hey1基因表达 | 第38-39页 |
| 3.6.2 MTA上调Notch1与Hes1蛋白水平 | 第39-40页 |
| 3.7 MTA通过抑制自噬体与溶酶体融合抑制自噬流 | 第40-44页 |
| 3.7.1 MTA抑制自噬流 | 第40-41页 |
| 3.7.2 MTA抑制自噬体与溶酶体融合 | 第41-42页 |
| 3.7.3 Notch1是自噬的底物 | 第42-43页 |
| 3.7.4 Notch1与LC3共定位实验 | 第43-44页 |
| 3.8 MTA中钙离子与硅酸根离子浓度测定 | 第44-45页 |
| 3.9 MTA促进牙髓细胞生长的信号通路图 | 第45-46页 |
| 第4章 总结与讨论 | 第46-50页 |
| 4.1 课题总结 | 第46-47页 |
| 4.2 课题讨论 | 第47-50页 |
| 参考文献 | 第50-56页 |
| 致谢 | 第56-58页 |
| 个人简历、在学期间发表的学术论文与研究成果 | 第58页 |
