| 摘要 | 第5-6页 |
| Abstract | 第6页 |
| 第一章 绪论 | 第9-21页 |
| 1.1 研究背景 | 第9-10页 |
| 1.2 海洋真菌次生代谢产物的研究现状 | 第10页 |
| 1.3 海洋真菌抗菌活性化合物的研究进展 | 第10-17页 |
| 1.3.1 海洋真菌DPPH自由基清除活性的研究进展 | 第14-16页 |
| 1.3.2 海洋真菌抑制乙酰胆碱酯酶活性的研究进展 | 第16-17页 |
| 1.4 等离子体诱变的机理及研究现状 | 第17-18页 |
| 1.4.1 等离子体诱变机理 | 第17页 |
| 1.4.2 等离子诱变研究现状 | 第17-18页 |
| 1.5 化学诱导的研究现状 | 第18-19页 |
| 1.6 选题依据、研究内容及意义 | 第19-21页 |
| 第二章 等离子体诱变下海洋真菌次生代谢产物的研究 | 第21-37页 |
| 2.1 材料与设备 | 第21-23页 |
| 2.1.1 实验设备 | 第21页 |
| 2.1.2 实验材料 | 第21-22页 |
| 2.1.3 培养基的配制 | 第22页 |
| 2.1.4 试剂的配制 | 第22-23页 |
| 2.2 实验方法 | 第23-26页 |
| 2.2.1 菌株及发酵提取 | 第23-24页 |
| 2.2.2 组分样品的活性跟踪 | 第24-25页 |
| 2.2.3 化合物样品的活性测定 | 第25-26页 |
| 2.3 结果与分析 | 第26-34页 |
| 2.3.1 出发菌株DEP01与诱变后菌株6-20-6的比较 | 第26页 |
| 2.3.2 粗提物样品6-20-6与已知化合物的HPLC的比较 | 第26-28页 |
| 2.3.3 分离流程 | 第28-29页 |
| 2.3.4 组分样品的HPLC分析及活性鉴定 | 第29-32页 |
| 2.3.5 化合物的解析 | 第32-34页 |
| 2.4 化合物活性的测定 | 第34-36页 |
| 2.4.1 抗菌活性测定结果与分析 | 第34-35页 |
| 2.4.2 化合物抑制乙酰胆碱酯酶活性的测定结果 | 第35页 |
| 2.4.3 化合物抗氧化活性的测定结果 | 第35-36页 |
| 2.5 本章小结 | 第36-37页 |
| 第三章 化学诱导下海洋真菌次生代谢产物的研究 | 第37-59页 |
| 3.1 材料与设备 | 第37-38页 |
| 3.1.1 实验设备 | 第37页 |
| 3.1.2 实验材料 | 第37-38页 |
| 3.1.3 培养基 | 第38页 |
| 3.2 实验方法 | 第38-41页 |
| 3.2.1 DEP01菌株诱导前种子的制备 | 第38页 |
| 3.2.2 诱导 | 第38-39页 |
| 3.2.3 抗菌活性试验 | 第39页 |
| 3.2.4 扩大培养 | 第39-40页 |
| 3.2.5 活性物质的提取 | 第40页 |
| 3.2.6 生物自显影活性跟踪 | 第40页 |
| 3.2.7 抗菌活性测试 | 第40页 |
| 3.2.8 大量发酵、提取与分离 | 第40-41页 |
| 3.3 结果与分析 | 第41-53页 |
| 3.3.1 加入诱导剂后的7块24孔板实验照片 | 第41-43页 |
| 3.3.2 各板的抗MRSA或E.coli AB3027(-)照片 | 第43-46页 |
| 3.3.3 DEP01抗MRSA菌提取物的薄层层析指纹图谱 | 第46-49页 |
| 3.3.4 扩大培养后的最优条件的选择 | 第49-53页 |
| 3.4 发酵、提取及分离结果 | 第53-58页 |
| 3.4.1 诱导对照图片 | 第53页 |
| 3.4.2 组分样品的薄层层析分析及活性鉴定 | 第53-54页 |
| 3.4.3 组分样品的抗菌活性测试结果 | 第54-55页 |
| 3.4.4 菌株发酵粗提取物的分离提取流程 | 第55-57页 |
| 3.4.5 化合物的解析 | 第57-58页 |
| 3.5 本章小结 | 第58-59页 |
| 第四章 结论 | 第59-60页 |
| 参考文献 | 第60-66页 |
| 攻读硕士学位期间发表的学术论文及专利 | 第66-67页 |
| 致谢 | 第67页 |
