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尖头大吻鱥HSPs基因克隆及热应激下HSPs和免疫相关基因的表达响应

摘要第4-6页
ABSTRACT第6-8页
第一章 文献综述第12-22页
    1.1 动物的应激第12-13页
    1.2 热应激对鱼类的影响第13-15页
        1.2.1 热应激对鱼类生存影响第13-14页
        1.2.2 热应激对鱼类生长影响第14页
        1.2.3 热应激对鱼类基因表达影响第14-15页
    1.3 热休克蛋白与应激第15-19页
        1.3.1 热休克蛋白分类及功能第16-18页
        1.3.2 鱼类热应激下热休克蛋白研究进展第18-19页
    1.4 应激与免疫第19-20页
        1.4.1 补体(C3)第19页
        1.4.2 核转录因子(NF-κB)第19-20页
        1.4.3 主要组织相容性复合物(major histocompatibility complex, MHC)第20页
    1.5 尖头大吻鱥生物学特征第20-21页
    1.6 本研究的目的和意义第21-22页
        1.6.1 研究目的第21页
        1.6.2 研究意义第21-22页
第二章 尖头大吻鱥热休克蛋白基因克隆及序列特征分析第22-62页
    2.1 材料和试剂仪器第22-24页
        2.1.1 实验材料第22页
        2.1.2 实验试剂、仪器第22-24页
    2.2 实验方法第24-34页
        2.2.1 总RNA提取及第一链c DNA的合成第24-27页
        2.2.2 热休克蛋白基因中间片段的克隆第27-31页
        2.2.3 热休克蛋白基因 5′和 3′片段扩增第31-34页
        2.2.4 热休克蛋白基因序列拼接及生物信息学分析第34页
    2.3 实验结果第34-58页
        2.3.1 RNA提取和检测第34-35页
        2.3.2 尖头大吻鱥热休克蛋白基因c DNA序列第35-36页
        2.3.3 热休克蛋白基因生物信息学及进化分析第36-58页
    2.4 讨论第58-62页
        2.4.1 HSP60序列特征分析第58页
        2.4.2 HSP70序列特征分析第58-59页
        2.4.3 HSP90β 序列特征分析第59-62页
第三章 热应激下尖头大吻鱥HSPs和免疫相关基因的表达响应第62-90页
    3.1 实验材料、仪器第62页
        3.1.1 实验材料来源第62页
        3.1.2 实验试剂设备第62页
    3.2 实验方法第62-66页
        3.2.1 热应激处理实验第62-63页
        3.2.2 总RNA的提取及第一链c DNA的合成第63页
        3.2.3 实时荧光定量PCR第63-66页
        3.2.4 数据分析第66页
    3.3 结果分析第66-84页
        3.3.1 热应激下HSP60、HSP70、HSP90β1 和HSP90β2 基因表达变化第66-76页
        3.3.2 热应激下尖头大吻鱥中C3、NF-κB2、MHCⅡB基因的表达第76-84页
    3.4 讨论第84-90页
        3.4.1 热应激下热休克蛋白基因的表达分析第84-87页
        3.4.2 热应激下C3、NF-κB2、MHCⅡB基因的表达分析第87-90页
第四章 总结第90-94页
参考文献第94-102页
附录 1 HSP60系统进化树涉及物种种类表第102-104页
附录 2 HSP70系统进化树涉及物种种类表第104-106页
附录 3 HSP90β 系统进化树涉及物种种类第106-110页
致谢第110-112页
攻读学位期间发表的学术论文目录第112-113页

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