| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 部分缩写的中英文对照 | 第10-14页 |
| 引言 | 第14-15页 |
| 第一章 综述 1 布鲁氏菌的研究现状 | 第15-24页 |
| 1.1 布鲁氏菌病疫情 | 第15页 |
| 1.1.1 世界布病分布情况 | 第15页 |
| 1.1.2 我国布病流行情况 | 第15页 |
| 1.2 布鲁氏菌及布病概况 | 第15-19页 |
| 1.2.1 布鲁氏菌理化特性 | 第15-16页 |
| 1.2.2 羊种布鲁氏菌 | 第16-17页 |
| 1.2.2.1 疫苗株M | 第16页 |
| 1.2.2.2 强毒株16M | 第16-17页 |
| 1.2.3 布病的诊断检测 | 第17页 |
| 1.2.3.1 鉴别诊断 | 第17页 |
| 1.2.3.2 病原学诊断 | 第17页 |
| 1.2.3.3 血清学诊断 | 第17页 |
| 1.2.3.4 乳状试验 | 第17页 |
| 1.2.3.5 皮肤过敏检测 | 第17页 |
| 1.2.3.6 分子生物学诊断 | 第17页 |
| 1.2.4 布鲁氏菌的致病机理 | 第17-18页 |
| 1.2.4.1 布氏小体 | 第18页 |
| 1.2.4.2 布鲁氏菌的作用机理 | 第18页 |
| 1.2.5 机体抗布鲁氏菌免疫特点 | 第18-19页 |
| 1.2.5.1 MΦ在抗布鲁氏菌感染中的作用 | 第18-19页 |
| 1.3 现阶段白介素在治疗疾病方面的研究及取得的成果 | 第19-20页 |
| 1.4 IL-2的免疫药理研究进展 | 第20-24页 |
| 1.4.1 IL-2的产生 | 第20页 |
| 1.4.2 IL-2的一般性质 | 第20页 |
| 1.4.3 IL-2的生物学作用 | 第20-21页 |
| 1.4.4 IL-2的临床应用 | 第21页 |
| 1.4.5 IL-2对T淋巴细胞内细胞因子水平的调节作用 | 第21-22页 |
| 1.4.6 IL-2对NK细胞的调节作用 | 第22页 |
| 1.4.7 研究的目的和意义 | 第22-23页 |
| 1.4.8 技术路线 | 第23-24页 |
| 第二章 实验研究 2 IL-2对布鲁氏菌侵染腹腔MΦ的调节作用 | 第24-41页 |
| 2.1 实验耗材 | 第24-25页 |
| 2.1.1 实验材料 | 第24页 |
| 2.1.2 主要仪器 | 第24页 |
| 2.1.3 主要药品及试剂 | 第24页 |
| 2.1.4 主要试剂的配置 | 第24-25页 |
| 2.1.5 菌株 | 第25页 |
| 2.1.6 分子生物学软件 | 第25页 |
| 2.2 实验方法 | 第25-28页 |
| 2.2.1 IL-2的配制 | 第25页 |
| 2.2.2 小鼠MΦ的获取和培养 | 第25-26页 |
| 2.2.3 GFP-M5和RFP-16M的培养 | 第26页 |
| 2.2.4 被布鲁氏杆菌刺激后,MΦ释放细胞因子的时效关系 | 第26页 |
| 2.2.5 MΦ的增殖变化 | 第26页 |
| 2.2.6 IL-2作用下MΦ吞噬RFP-16M和GFP-M5的能力 | 第26-27页 |
| 2.2.7 IL-2作用RFP-16M侵染的MΦ的细胞因子释放的时效关系 | 第27页 |
| 2.2.8 台盼蓝染色 | 第27页 |
| 2.2.9 RT-PCR | 第27-28页 |
| 2.2.10 统计分析 | 第28页 |
| 2.3 结果与分析 | 第28-41页 |
| 2.3.1 RNA的提取 | 第28-29页 |
| 2.3.2 反转录和PCR | 第29-30页 |
| 2.3.3 RFP-16M和GFP-M5细胞中的荧光显示 | 第30页 |
| 2.3.4 IL-2对GFP-M5侵染MΦ的调节作用 | 第30-34页 |
| 2.3.4.1 GFP-M5侵染MΦ后细胞释放各细胞因子的时效关系 | 第30-31页 |
| 2.3.4.2 IL-2作用下MΦ胞内GFP-M5活菌数目 | 第31-32页 |
| 2.3.4.3 IL-2对布鲁氏菌(GFP-M5)侵染腹腔MΦ后细胞释放TNF-α的时效关系 | 第32-33页 |
| 2.3.4.4 IL-2对布鲁氏菌(GFP-M5)侵染MΦ后细胞释放IFN-γ的时效关系 | 第33页 |
| 2.3.4.5 IL-2对布鲁氏菌侵染腹腔MΦ后细胞释放NO的时效关系 | 第33-34页 |
| 2.3.5 IL-2对RFP-16M侵染MΦ的调节作用 | 第34-41页 |
| 2.3.5.1 MΦ被RFP-16M侵染后,IL-2调节作用下其胞内含菌量的变化 | 第34-35页 |
| 2.3.5.2 MΦ被RFP-16M侵染后,IL-2调节作用下细胞数量增殖的变化 | 第35页 |
| 2.3.5.3 MΦ被RFP-16M侵染后,IL-2调节作用下细胞吞噬能力的变化 | 第35-37页 |
| 2.3.5.4 MΦ被RFP-16M侵染后,IL-2调节作用下细胞释放TNF-α的能力 | 第37页 |
| 2.3.5.5 MΦ被RFP-16M侵染后,IL-2调节作用下细胞释放IFN-γ的能力 | 第37-38页 |
| 2.3.5.6 MΦ被RFP-16M侵染后,IL-2调节作用下细胞释放NO的能力 | 第38-39页 |
| 2.3.5.7 MΦ被RFP-16M侵染后,IL-2调节作用下细胞的存活能力 | 第39-41页 |
| 第三章 讨论与结论 | 第41-44页 |
| 3.1 讨论 | 第41-43页 |
| 3.2 结论 | 第43-44页 |
| 第四章 总结与展望 | 第44-45页 |
| 参考文献 | 第45-50页 |
| 致谢 | 第50-51页 |
| 附录 | 第51-59页 |
| 小鼠TNF-α、IFN-γ、NO酶联免疫分析试剂盒 | 第51-52页 |
| IL-2调节作用下，MΦ被M5菌株侵染所释放的各因子水平标曲的绘制 | 第52-53页 |
| IL-2调节作用下，MΦ被16M菌株侵染所释放的各因子水平标曲的绘制 | 第53-55页 |
| 附表1 主要仪器及生产厂家 | 第55-56页 |
| 附表2 主要药品及试剂 | 第56-57页 |
| 附表3 MΦ被16M侵染后，IL-2 调节作用下其胞内含菌量的变化（(?)±s n=5） | 第57页 |
| 附表4 MΦ被16M侵染后，IL-2 调节作用下细胞数量增殖的变化（(?)±s n=5） | 第57页 |
| 附表5 MΦ被16M侵染后，IL-2调节作用下细胞吞噬能力的变化（(?)±s n=5） | 第57页 |
| 附表6 | 第57-58页 |
| 附表7 MΦ被16M侵染后，IL-2调节作用下细胞释放TNF-α的能力（(?)±s n=5） | 第58页 |
| 附表8 MΦ被16M侵染后，IL-2调节作用下细胞释放IFN-γ的能力（(?)±s n=5） | 第58页 |
| 附表9 MΦ被16M侵染后，IL-2调节作用下细胞释放NO的能力（(?)±s n=5） | 第58页 |
| 附表10 MΦ被16M侵染后，IL-2调节作用下细胞的存活能力（(?)±s n=5） | 第58-59页 |
| 作者简介 | 第59-60页 |
| 石河子大学硕士研究生学位论文导师评阅表 | 第60页 |
