| 摘要 | 第4-7页 |
| ABSTRACT | 第7-10页 |
| 縮略词表 | 第14-15页 |
| 第一部分 前言 | 第15-26页 |
| 1. 多糖概述 | 第15-19页 |
| 1.1 多糖的化学结构 | 第15页 |
| 1.2 多糖的提取与纯化 | 第15-17页 |
| 1.3 多糖的药理作用 | 第17-19页 |
| 2. 青蒿简介 | 第19-21页 |
| 2.1 青蒿概述 | 第19-20页 |
| 2.2 青蒿的化学成分 | 第20页 |
| 2.3 青蒿的药理作用 | 第20-21页 |
| 3. 青蒿多糖概述 | 第21-22页 |
| 3.1 青蒿多糖的提取工艺 | 第22页 |
| 3.2 青蒿多糖的药理作用 | 第22页 |
| 4. 氧化应激研究概况 | 第22-25页 |
| 4.1 诱发氧化应激的因素 | 第22页 |
| 4.2 氧化应激损伤机制 | 第22-23页 |
| 4.3 氧化应激引起的疾病 | 第23-25页 |
| 4.4 抗氧化治疗 | 第25页 |
| 5. 本研究的目的及意义 | 第25-26页 |
| 第二部分 实验研究 | 第26-73页 |
| 一、青蒿多糖的制备及理化性质分析 | 第26-32页 |
| 1. 材料与方法 | 第26-29页 |
| 1.1 药材及试剂配制 | 第26页 |
| 1.2 所需仪器 | 第26页 |
| 1.3 青蒿多糖的制备 | 第26-27页 |
| 1.4 青蒿多糖总糖含量测定 | 第27页 |
| 1.5 青蒿多糖理化性质分析 | 第27-28页 |
| 1.6 青蒿多糖的红外光谱分析 | 第28-29页 |
| 2. 结果与分析 | 第29-30页 |
| 2.1 青蒿多糖总糖含量测定 | 第29页 |
| 2.2 青蒿多糖理化性质分析 | 第29页 |
| 2.3 红外光谱分析 | 第29-30页 |
| 3. 讨论 | 第30-32页 |
| 3.1 多糖含量测定 | 第30页 |
| 3.2 理化性质分析 | 第30-31页 |
| 3.3 红外光谱分析 | 第31-32页 |
| 二、青蒿多糖调节小鼠免疫功能的研究 | 第32-43页 |
| 1. 材料与方法 | 第32-35页 |
| 1.1 实验动物 | 第32页 |
| 1.2 主要试剂 | 第32页 |
| 1.3 主要仪器及设备 | 第32页 |
| 1.4 药品配制 | 第32页 |
| 1.5 青蒿多糖对免疫抑制小鼠免疫功能的调节 | 第32-33页 |
| 1.6 青蒿多糖对正常小鼠免疫功能的调节 | 第33页 |
| 1.7 测定指标及检测方法 | 第33-35页 |
| 1.8 统计学处理 | 第35页 |
| 2 结果 | 第35-40页 |
| 2.1 青蒿多糖对免疫抑制小鼠免疫功能的影响 | 第35-39页 |
| 2.2 青蒿多糖对正常小鼠免疫功能的影响 | 第39-40页 |
| 3 讨论 | 第40-43页 |
| 3.1 免疫模型建立 | 第40-41页 |
| 3.2 免疫器官指数与组织形态学影响 | 第41页 |
| 3.3 组织形态学影响 | 第41页 |
| 3.4 细胞因子水平变化 | 第41-42页 |
| 3.5 溶菌酶含量变化 | 第42-43页 |
| 三、青蒿多糖急性毒性实验 | 第43-46页 |
| 1. 材料与方法 | 第43页 |
| 1.1 实验动物 | 第43页 |
| 1.2 主要药品及配制 | 第43页 |
| 1.3 仪器设备 | 第43页 |
| 1.4 方法 | 第43页 |
| 1.5 计算方法及判断标准 | 第43页 |
| 2. 结果 | 第43-45页 |
| 2.1 预实验结果 | 第43页 |
| 2.2 正式试验结果 | 第43-45页 |
| 3. 讨论 | 第45-46页 |
| 四、青蒿多糖体内抗炎试验的研究 | 第46-49页 |
| 1. 材料与方法 | 第46-47页 |
| 1.1 实验动物 | 第46页 |
| 1.2 药品试剂 | 第46页 |
| 1.3 药品配制 | 第46页 |
| 1.4 主要仪器及设备 | 第46页 |
| 1.5 动物分组及处理 | 第46页 |
| 1.6 检测和观察指标 | 第46-47页 |
| 1.7 数据分析 | 第47页 |
| 2. 结果 | 第47-48页 |
| 2.1 青蒿多糖对致炎小鼠脏器指数的影响 | 第47页 |
| 2.2 青蒿多糖对小鼠耳廓肿胀的影响 | 第47-48页 |
| 3. 讨论 | 第48-49页 |
| 五、青蒿多糖抗氧化作用的研究 | 第49-72页 |
| 1. 材料与方法 | 第49-56页 |
| 1.1 细胞与病毒 | 第49页 |
| 1.2 主要试剂 | 第49页 |
| 1.3 试剂配制 | 第49-51页 |
| 1.4 主要仪器和设备 | 第51页 |
| 1.5 RAW264.7细胞复苏、培养及细胞悬液制备 | 第51页 |
| 1.6 猪脾细胞悬液制备 | 第51页 |
| 1.7 青蒿多糖对RAW264.7细胞、猪脾细胞存活率的影响 | 第51-52页 |
| 1.8 氧化应激模型的建立 | 第52页 |
| 1.9 青蒿多糖抗氧化功能的研究 | 第52-53页 |
| 1.10 检测方法 | 第53-55页 |
| 1.11 统计学处理 | 第55-56页 |
| 2. 结果 | 第56-68页 |
| 2.1 青蒿多糖对RAW264.7细胞、猪脾细胞存活率的影响 | 第56-57页 |
| 2.2 PCV-2诱导RAW264.7细胞氧化应激模型建立 | 第57-59页 |
| 2.3 PCV-2诱导猪脾细胞氧化应激模型建立 | 第59-62页 |
| 2.4 青蒿多糖对PCV-2诱导RAW264.7细胞氧化应激的影响 | 第62-65页 |
| 2.5 青蒿多糖对PCV-2诱导猪脾细胞氧化应激影响 | 第65-68页 |
| 3. 讨论 | 第68-72页 |
| 3.1 青蒿多糖对RAW264.7、猪脾细胞存活率的影响 | 第68页 |
| 3.2 PCV2诱导免疫细胞氧化应激模型的建立 | 第68-69页 |
| 3.3 青蒿多糖对细胞NO的影响 | 第69页 |
| 3.4 青蒿多糖对细胞ROS的影响 | 第69-70页 |
| 3.5 青蒿多糖对细胞GSH,GSSG的影响 | 第70页 |
| 3.6 青蒿多糖对细胞MDA水平和T-SOD活性的影响 | 第70-72页 |
| 六、结论 | 第72-73页 |
| 参考文献 | 第73-80页 |
| 致谢 | 第80-81页 |
| 发表论文 | 第81页 |
