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抗CD20抗体在CHO细胞内的高表达及其定点偶联MMAE的初步研究

致谢第4-5页
中文摘要第5-7页
Abstract第7-9页
英文缩略词表第10-14页
第一章 绪论第14-21页
    1.1 单克隆抗体第14-16页
    1.2 哺乳动物细胞表达系统第16-18页
    1.3 GC-rich载体在哺乳动物细胞表达系统中的应用第18-19页
    1.4 抗体定点偶联小分子药物第19-20页
    1.5 本研究主要创新点第20-21页
第二章 GC-rich载体用于提高CHO细胞表达全人源抗CD20抗体2F2的研究第21-48页
    2.1 前言第21-22页
    2.2 实验材料及基本操作第22-30页
        2.2.1 材料与试剂第22页
        2.2.2 实验菌株和细胞第22页
        2.2.3 实验仪器第22-23页
        2.2.4 相关溶液的配制第23-28页
        2.2.5 基本操作第28-30页
    2.3 实验步骤与方法第30-40页
        2.3.1 重组表达质粒pMH3-H和pMH3-L的构建第30-38页
        2.3.2 脂质体转染CHO细胞第38-39页
        2.3.3 药物筛选与稳定单克隆株挑取第39页
        2.3.4 CHO(2F2)的贴壁表达与纯化第39-40页
    2.4 实验结果第40-46页
        2.4.1 真核表达载体构建第40-42页
        2.4.2 脂质体转染实验第42页
        2.4.3 单克隆筛选实验第42-44页
        2.4.4 GC-rich(+)真核表达载体与GC-rich(-)真核表达载体的比较第44-45页
        2.4.5 抗CD20抗体2F2的表达与纯化第45-46页
    2.5 讨论第46-48页
第三章 重组CHO细胞的无血清悬浮培养第48-63页
    3.1 前言第48-49页
    3.2 实验仪器和实验试剂第49-55页
        3.2.1 细胞和试剂第49页
        3.2.2 实验仪器第49-50页
        3.2.3 相关溶液配制第50-53页
        3.2.4 基础操作第53-55页
    3.3 实验方法第55-57页
        3.3.1 重组CHO细胞无血清驯化和悬浮培养第55-56页
        3.3.2 摇瓶培养第56页
        3.3.3 摇瓶批次补料培养第56-57页
        3.3.4 生物反应器批次补料培养第57页
    3.4 实验结果第57-62页
        3.4.1 重组CHO细胞的无血清驯化与摇瓶表达第57-60页
        3.4.2 摇瓶批次补料表达第60-61页
        3.4.3 5-L生物反应器批次补料表达第61-62页
    3.5 讨论第62-63页
第四章 抗CD20抗体定点偶联小分子药物MMAE第63-80页
    4.1 前言第63-64页
    4.2 实验材料及基本操作第64-65页
        4.2.1 材料与试剂第64页
        4.2.2 实验菌株和细胞第64页
        4.2.3 实验仪器第64-65页
        4.2.4 相关溶液的配制第65页
        4.2.5 基本操作第65页
    4.3 实验步骤和方法第65-72页
        4.3.1 构建表达质粒pMH3-LV205C和pMH3-HA123C第67-70页
        4.3.2 脂质体转染CHO细胞第70页
        4.3.3 药物筛选与稳定单克隆株挑取第70页
        4.3.4 CHO(HLM)的贴壁表达与纯化第70-71页
        4.3.5 抗体HLM与小分子药物vcMMAE偶联第71页
        4.3.6 流式细胞仪检测2F2,HLM及HLM-vcMMAE的亲和性第71页
        4.3.7 细胞毒性检测第71-72页
    4.4 实验结果第72-79页
        4.4.1 点突变第72-73页
        4.4.2 细胞转染与克隆筛选第73-74页
        4.4.3 抗体HLM表达与纯化第74页
        4.4.4 抗体偶联物HLM-vcMMAE的合成第74-79页
    4.5 讨论第79-80页
结论第80-81页
参考文献第81-87页
综述:抗体在CHO细胞内的高表达策略第87-103页
    References第99-103页
作者简历及在读期间主要研究成果第103页

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