| 摘要 | 第6-8页 |
| ABSTRACT | 第8-10页 |
| 第一章 绪论 | 第17-31页 |
| 1.1 艾滋病 | 第17-19页 |
| 1.1.1 艾滋病简介 | 第17页 |
| 1.1.2 艾滋病传播途径 | 第17-18页 |
| 1.1.3 免疫细胞在HIV感染初期的表现 | 第18-19页 |
| 1.1.4 我国艾滋病现状 | 第19页 |
| 1.2 细胞自噬 | 第19-24页 |
| 1.2.1 细胞自噬的分类 | 第20页 |
| 1.2.2 自噬发生的过程及调控 | 第20-23页 |
| 1.2.3 自噬与免疫 | 第23-24页 |
| 1.3 硫氧还蛋白 | 第24-28页 |
| 1.3.1 硫氧还蛋白简介 | 第24页 |
| 1.3.2 硫氧还蛋白结构和分类 | 第24-25页 |
| 1.3.3 硫氧还蛋白的生物学功能 | 第25-28页 |
| 1.4 细胞自噬与抗原提呈 | 第28-30页 |
| 1.5 本论文研究的意义 | 第30-31页 |
| 第二章 甲基苯丙胺能够诱导细胞自噬 | 第31-54页 |
| 2.1 引言 | 第31页 |
| 2.2 实验方案 | 第31-32页 |
| 2.3 实验材料和方法 | 第32-45页 |
| 2.3.1 Jurkat细胞 | 第32-33页 |
| 2.3.2 实验药物 | 第33页 |
| 2.3.3 实验试剂 | 第33-35页 |
| 2.3.4 实验仪器设备 | 第35-37页 |
| 2.3.5 试剂配方 | 第37-39页 |
| 2.3.6 实验方法 | 第39-44页 |
| 2.3.7 MTT 实验 | 第44-45页 |
| 2.4 结果与分析 | 第45-53页 |
| 2.4.1 METH影响Jurkat细胞的存活 | 第45-46页 |
| 2.4.2 METH诱导Jurkat细胞自噬 | 第46-51页 |
| 2.4.3 自噬抑制剂CQ能够降低METH引发的Jurkat细胞自噬 | 第51-53页 |
| 2.5 讨论 | 第53-54页 |
| 第三章 METH对C57BL/6小鼠脾脏和骨髓的影响 | 第54-65页 |
| 3.1 引言 | 第54-55页 |
| 3.2 实验方案 | 第55-56页 |
| 3.3 实验材料和方法 | 第56-58页 |
| 3.3.1 实验的主要试剂和来源 | 第56页 |
| 3.3.2 实验小鼠 | 第56页 |
| 3.3.3 实验方法 | 第56-58页 |
| 3.3.3.1 组织RNA的提取 | 第56-57页 |
| 3.3.3.2 Trx-1和β-actin的基因引物及探针序列 | 第57页 |
| 3.3.3.3 骨髓细胞的抽提 | 第57-58页 |
| 3.3.3.4 组织蛋白的提取 | 第58页 |
| 3.4 结果与分析 | 第58-64页 |
| 3.4.1 甲基苯丙胺对C57BL/6小鼠脾脏和骨髓内Trx-1 mRNA水平和蛋白水平表达的影响 | 第58-60页 |
| 3.4.2 甲基苯丙胺能够诱发C57BL/6小鼠脾脏和骨髓细胞自噬 | 第60-62页 |
| 3.4.3 甲基苯丙胺对C57BL/6小鼠脾脏和骨髓细胞中MHCII表达的影响 | 第62-64页 |
| 3.5 讨论 | 第64-65页 |
| 第四章 甲基苯丙胺对高表达hTrx-1转基因小鼠脾脏和骨髓的影响 | 第65-74页 |
| 4.1 实验方案 | 第65-66页 |
| 4.2 实验材料和方法 | 第66-67页 |
| 4.2.1 实验的主要试剂和来源 | 第66页 |
| 4.2.2 实验小鼠 | 第66页 |
| 4.2.3 实验方法 | 第66-67页 |
| 4.2.3.1 骨髓细胞的抽提 | 第66-67页 |
| 4.2.3.2 组织蛋白的提取 | 第67页 |
| 4.3 结果与分析 | 第67-72页 |
| 4.3.1 甲基苯丙胺对高表达hTrx-1转基因小鼠脾脏和骨髓内鼠源Trx-1蛋白水平表达的影响 | 第68-69页 |
| 4.3.2 甲基苯丙胺对高表达hTrx-1转基因小鼠脾脏和骨髓内LC3蛋白水平表达的影响 | 第69-71页 |
| 4.3.3 甲基苯丙胺对高表达hTrx-1转基因小鼠脾脏和骨髓内MHCII蛋白水平表达的影响 | 第71-72页 |
| 4.4 讨论 | 第72-74页 |
| 第五章 总结和展望 | 第74-76页 |
| 致谢 | 第76-77页 |
| 参考文献 | 第77-83页 |
| 附录A | 第83页 |
| 附录B | 第83-85页 |
| 综述 | 第85-89页 |
| 参考文献 | 第87-89页 |
