| 摘要 | 第4-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 符号说明 | 第9-10页 |
| 1 前言 | 第10-13页 |
| 2 材料与方法 | 第13-24页 |
| 2.1 材料 | 第13-17页 |
| 2.1.1 菌株来源 | 第13页 |
| 2.1.2 临床标本 | 第13页 |
| 2.1.3 主要仪器 | 第13页 |
| 2.1.4 主要试剂 | 第13-15页 |
| 2.1.5 试剂配制 | 第15-17页 |
| 2.2 方法 | 第17-24页 |
| 2.2.1 引物及探针设计 | 第17页 |
| 2.2.2 MTB基因组DNA提取 | 第17-18页 |
| 2.2.3 琼脂糖凝胶电泳鉴定基因组DNA | 第18页 |
| 2.2.4 基因组DNA纯度和浓度的鉴定 | 第18-19页 |
| 2.2.5 PCR扩增 | 第19页 |
| 2.2.6 PCR产物纯化 | 第19页 |
| 2.2.7 纳米金探针的标记 | 第19-20页 |
| 2.2.8 纳米金标记银染增强显色检测体系的优化 | 第20-22页 |
| 2.2.9 方法学评价 | 第22-23页 |
| 2.2.10 临床标本的检测 | 第23页 |
| 2.2.11 统计学方法 | 第23-24页 |
| 3 结果 | 第24-31页 |
| 3.1 纳米金及纳米金探针的表征结果分析 | 第24-26页 |
| 3.1.1 紫外-可见分光光度计扫描纳米金及纳米金探针的表征结果分析 | 第24-25页 |
| 3.1.2 透射电子显微镜对标记巯基探针前后纳米金颗粒的形态观察 | 第25-26页 |
| 3.2 纳米金标记银染增强显色检测体系的优化结果 | 第26-27页 |
| 3.2.1 银染显色时间的优化结果 | 第26页 |
| 3.2.2 生物素探针的优化结果 | 第26-27页 |
| 3.2.3 纳米金探针的优化结果 | 第27页 |
| 3.3 方法学评价 | 第27-29页 |
| 3.3.1 灵敏度检测 | 第27-28页 |
| 3.3.2 线性范围分析 | 第28页 |
| 3.3.3 特异性检测 | 第28-29页 |
| 3.3.4 重复性检测 | 第29页 |
| 3.4 临床标本检测结果 | 第29-31页 |
| 4 讨论 | 第31-36页 |
| 4.1 纳米金在核酸检测中的应用 | 第31-32页 |
| 4.2 纳米金标记银染增强法 | 第32-36页 |
| 4.2.1 纳米金标记银染增强法的实验原理 | 第32-33页 |
| 4.2.2 纳米金探针的设计与标记 | 第33-34页 |
| 4.2.3 纳米金标记银染增强法体系的优化 | 第34-35页 |
| 4.2.4 方法学评价 | 第35页 |
| 4.2.5 临床标本的检测 | 第35-36页 |
| 5 结论 | 第36-37页 |
| 参考文献 | 第37-41页 |
| 综述 | 第41-52页 |
| 参考文献 | 第48-52页 |
| 攻读学位期间主要的研究成果 | 第52-53页 |
| 致谢 | 第53页 |