| 摘要 | 第4-7页 |
| Abstract | 第7-10页 |
| 英文缩略语 | 第11-16页 |
| 1 前言 | 第16-19页 |
| 2 实验材料和方法 | 第19-30页 |
| 2.1 主要仪器和试剂 | 第19-22页 |
| 2.1.1 主要试剂 | 第19-21页 |
| 2.1.2 主要仪器 | 第21-22页 |
| 2.2 实验方法 | 第22-30页 |
| 2.2.1 nHAC/PLGAs支架的制备 | 第22-23页 |
| 2.2.2 支架形貌观察 | 第23页 |
| 2.2.3 支架孔隙率及吸水率测试 | 第23页 |
| 2.2.4 支架机械性能测试 | 第23页 |
| 2.2.5 支架生长因子释放特性及活性检测 | 第23-24页 |
| 2.2.6 支架体外降解特性检测 | 第24页 |
| 2.2.7 nHAC/PLGAs支架生物相容性检测 | 第24页 |
| 2.2.8 hADSCs在不同条件下体外成骨活性测定 | 第24-26页 |
| 2.2.9 成骨相关信号通路分子表达 | 第26-27页 |
| 2.2.10 抑制相关信号通路后的成骨分化效应 | 第27页 |
| 2.2.11 osterix稳定敲减后成骨指标的变化 | 第27页 |
| 2.2.12 rADSCs的提取、培养及鉴定 | 第27-28页 |
| 2.2.13 动物实验 | 第28-29页 |
| 2.2.14 结果分析与统计学处理 | 第29-30页 |
| 3 实验结果 | 第30-59页 |
| 3.1 nHAC/PLGAs支架表征 | 第30-31页 |
| 3.1.1 支架的大体外观 | 第30页 |
| 3.1.2 SEM观察支架微观形貌 | 第30页 |
| 3.1.3 支架理化性质检测 | 第30-31页 |
| 3.2 PLGAs微球对BMP-2及VEGF的释放动力学特性及活性保持 | 第31-33页 |
| 3.2.1 BMP-2及VEGF的包封率及释放曲线 | 第31页 |
| 3.2.2 BMP-2及VEGF的活性检测 | 第31-33页 |
| 3.3 nHAC/PLGAs支架体外降解 | 第33-35页 |
| 3.3.1 SEM观察支架在降解工程中的微观形貌 | 第33-34页 |
| 3.3.2 支架降解率测定 | 第34-35页 |
| 3.4 nHAC/PLGAs支架生物学相容性检测 | 第35-36页 |
| 3.4.1 细胞增殖活性测定 | 第35-36页 |
| 3.4.2 SEM观察细胞在支架内部生长情况 | 第36页 |
| 3.5 nHAC/PLGAs支架与hADSCs复合体体外成骨活性检测 | 第36-47页 |
| 3.5.1 增殖活性测定 | 第36-37页 |
| 3.5.2 ALP活性检测 | 第37-38页 |
| 3.5.3 矿化结节测定 | 第38-39页 |
| 3.5.4 col1表达测定 | 第39-42页 |
| 3.5.5 成骨转录因子表达检测 | 第42-47页 |
| 3.6 hADSCs于nHAC/PLGAs支架内成骨过程中相关信号通路检测 | 第47-48页 |
| 3.7 VEGF与BMP-2共同作用增强hADSCs于nHAC/PLGAs支架内成骨分化的可能机制探讨 | 第48-50页 |
| 3.8 rADSCs生物学特性观察 | 第50-52页 |
| 3.8.1 rADSCs形态观察及增殖特性检测 | 第50-51页 |
| 3.8.2 rADSCs干细胞特性鉴定 | 第51-52页 |
| 3.9 rADSCs与nHAC/PLGAs-BMP-2/VEGF支架复合体修复兔下颌骨缺损 | 第52-59页 |
| 3.9.1 一般情况观察 | 第52-53页 |
| 3.9.2 影像学检查 | 第53-55页 |
| 3.9.3 大体标本观察 | 第55-56页 |
| 3.9.4 组织学观察 | 第56-59页 |
| 4 讨论 | 第59-65页 |
| 5 结论 | 第65-66页 |
| 本研究创新性的自我评价 | 第66-67页 |
| 参考文献 | 第67-74页 |
| 综述 | 第74-86页 |
| 参考文献 | 第79-86页 |
| 攻读学位期间取得的研究成果 | 第86-87页 |
| 致谢 | 第87-89页 |
| 个人简历 | 第89页 |
