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耐热木聚糖酶的分子设计、重组表达及其酶学性质研究

摘要第5-8页
Abstract第8-10页
缩写语表(Abbreviations)第11-18页
前言第18-20页
第一章 文献综述第20-30页
    第一节 木聚糖的结构与性质第20-22页
        1. 木聚糖的结构第20-21页
        2. 木聚糖的性质第21-22页
            2.1 粘性第21页
            2.2 吸附能力第21页
            2.3 抗营养特性第21-22页
    第二节 木聚糖的降解酶系统第22-26页
        1. 木聚糖的降解途径及其关键酶第22-23页
        2. 木聚糖酶的分类第23-24页
        3. 木聚糖酶的工业应用第24-26页
            3.1 造纸工业第24页
            3.2 食品工业第24-25页
            3.3 饲料工业第25-26页
    第三节 耐热木聚糖酶研究意义与进展第26-30页
        1. 耐热木聚糖酶研究的意义第26页
        2. 耐热木聚糖酶研究进展第26-30页
            2.1 耐热木聚糖酶来源第26-27页
            2.2 耐热木聚糖酶的异源表达第27-28页
            2.3 蛋白质工程耐热改造方法第28-30页
第二章 本研究的目的、内容、意义与技术路线第30-32页
    1. 研究目的第30页
    2. 研究内容第30页
    3. 研究意义第30-31页
    4. 本研究技术路线第31-32页
第三章 实验研究第32-90页
    第一节 里氏木霉Xyn2克隆、序列分析及突变基因的设计第32-51页
        1. 克隆策略及突变基因设计第32页
        2. 实验材料第32-35页
        3. 实验方法第35-43页
            3.1 里氏木霉木聚糖酶基因Xyn2克隆第35-41页
                3.1.1 里氏木霉Rut C-30(Trichoderma reesi Rut C-30)活化第35页
                3.1.2 里氏木霉Xyn2诱导表达第35页
                3.1.3 总RNA提取第35-36页
                3.1.4 cDNA合成第36-37页
                3.1.5 里氏木霉Xyn2克隆第37-38页
                3.1.6 PCR产物电泳鉴定第38页
                3.1.7 pMD19-T(simple)载体连接(TA克隆法)第38页
                3.1.8 重组质粒T-Xyn2转化与筛选第38-40页
                3.1.9 T.ressei Xyn2序列分析第40-41页
            3.2 Xyn2突变基因构建第41-43页
                3.2.1 突变策略第41页
                3.2.2 突变PCR第41-42页
                3.2.3 突变PCR产物电泳鉴定第42页
                3.2.4 去除模板质粒第42页
                3.2.5 突变质粒转化第42页
                3.2.6 重组大肠杆菌筛选第42-43页
        4 实验结果第43-49页
            4.1 里氏木霉Xyn2基因克隆第43-46页
                4.1.1 总RNA提取第43页
                4.1.2 Xyn2扩增PCR产物鉴定第43-44页
                4.1.3 菌落PCR鉴定第44页
                4.1.4 DNA测序结果第44-45页
                4.1.5 蛋白质三维结构建模及分析第45-46页
            4.2 Xyn2突变基因构建第46-49页
                4.2.1 突变PCR鉴定第46-47页
                4.2.2 突变Xyn2基因重组大肠杆菌筛选第47-48页
                4.2.3 DNA测序及比对第48页
                4.2.4 氨基酸序列比对第48-49页
        5 讨论第49-51页
    第二节 Xyn2在大肠杆菌中的表达及酶学性质分析第51-69页
        1. 表达及纯化策略第51页
        2. 实验材料第51-54页
        3. 实验方法第54-59页
            3.1 表达载体构建第54-55页
                3.1.1 双酶切第54页
                3.1.2 酶切片段回收第54页
                3.1.3 XynⅡ基因及其突变体与表达载体pET32a(+)连接第54-55页
                3.1.4 转化筛选第55页
                3.1.5 测序第55页
            3.2 原核表达第55-56页
                3.2.1 表达菌株构建第55页
                3.2.2 诱导表达第55-56页
                3.2.3 可溶蛋白收集第56页
                3.2.4 Xyn2及其突变体SDS-PAGE鉴定第56页
                3.2.5 Xyn2突变体质谱检测第56页
                3.2.6 Xyn2突变体二硫键检测第56页
            3.3 蛋白质定量第56-57页
            3.4 酶学性质分析第57-59页
                3.4.1 标准酶活力测定体系第57-58页
                3.4.2 最适酶促反应温度第58页
                3.4.3 最适酶促反应pH第58页
                3.4.4 热稳定性第58页
                3.4.5 pH稳定性第58页
                3.4.6 酶促动力学参数第58-59页
                3.4.7 二硫键对热稳定性的影响第59页
        4. 实验结果第59-64页
            4.1 木聚糖酶Xyn2及其突变体SDS-PAGE鉴定第59页
            4.2 木聚糖酶Xyn2突变体质谱鉴定第59-61页
            4.3 二硫键检测第61-62页
            4.4 pH对酶活力的影响第62页
            4.5 温度对酶活力的影响第62-63页
            4.6 酶的热衰减第63页
            4.7 二硫键对没热稳定性的影响第63-64页
            4.8 酶促动力学参数第64页
        5. 讨论第64-69页
    第三节、Xyn2在毕赤酵母中的表达及酶学性质分析第69-80页
        1. 表达及纯化策略第69页
        2. 实验材料第69-72页
        3. 实验方法第72-75页
            3.1 重组pPICZαA载体构建第72页
            3.2 重组pPICZαA载体线性化及浓缩第72-73页
            3.3 重组毕赤酵母构建第73页
                3.3.1 P.pastoris x-33感受态制备第73页
                3.3.2 电击转化与筛选第73页
                3.3.3 基组PCR鉴定第73页
            3.4 毕酵母诱导表达第73-74页
                3.4.1 平活化第73页
                3.4.2 一种子制备第73-74页
                3.4.3 扩培养第74页
                3.4.4 诱培养第74页
                3.4.5 粗液收集第74页
            3.5 分泌蛋白及其糖基化分析第74页
                3.5.1 Xyn2及其突变体糖基化位点预测第74页
                3.5.2 分泌蛋白及其糖基化SDS-PAGE鉴定第74页
            3.6 蛋白定量第74页
            3.7 酶学性质分析第74-75页
                3.7.1 酶活力测定第74页
                3.7.2 动力学参数测定第74页
                3.7.3 最适温度分析第74-75页
                3.7.4 最适pH分析第75页
                3.7.5 热稳定性分析第75页
                3.7.6 pH稳定性分析第75页
                3.7.7 糖基化对热稳定性的影响第75页
        4 实验结果第75-78页
            4.1 糖基化预测及检测第75-76页
            4.2 糖基化对热稳定性的影响第76页
            4.3 酶活力及动力学参数第76-77页
            4.4 pH对酶活力的影响及pH稳定性第77页
            4.5 温度对酶活力的影响及热稳定性第77-78页
        5 讨论第78-80页
    第四节 、耐热木聚糖酶表达条件优化及其稳定性研究第80-90页
        1. 表达条件优化及稳定性评估策略第80页
        2. 实验材料第80-81页
        3. 实验方法第81-82页
            3.1 表达条件优化第81-82页
                3.1.1 响应面实验设计第81-82页
                3.1.2 诱导表达第82页
                3.1.3 粗酶液收集及酶活力测定第82页
                3.1.4 数据分析第82页
            3.2 木聚糖酶肠道稳定性评定第82页
                3.2.1 实验设计第82页
                3.2.2 饲养管理第82页
                3.2.3 样品采集第82页
                3.2.4 食糜木聚糖酶残余酶活测定第82页
        4 实验结果第82-88页
            4.1 表达条件优化第82-88页
                4.1.1 各表达条件酶活力第82-83页
                4.1.2 响应面模型分析第83-84页
                4.1.3 单因素分析第84-85页
                4.1.4 双因素交互性分析第85-86页
                4.1.5 最优实验组合第86-88页
            4.2 耐热木聚糖酶稳定性评估第88页
        5 讨论第88-90页
第四章 全文总结、创新点和今后研究展望第90-93页
    一、全文总结第90-91页
    二、本文主要创新点第91页
    三、今后需进一步研究的问题第91-93页
参考文献第93-98页
致谢第98-99页
攻读硕士期间发表文章第99页

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