摘要 | 第6-7页 |
abstract | 第7-8页 |
第1章 绪论 | 第12-24页 |
1.1 心血管疾病的研究现状 | 第12-13页 |
1.2 医用支架材料发展历史 | 第13-14页 |
1.3 可降解支架材料的种类 | 第14-18页 |
1.4 血管支架材料与血管组织的相互作用 | 第18-19页 |
1.5 血管平滑肌细胞炎性表型转变引发AS | 第19-21页 |
1.6 本论文研究目的和意义及其研究内容 | 第21-23页 |
1.6.1 研究意义和目的 | 第21-22页 |
1.6.2 研究内容 | 第22-23页 |
1.7 本论文的技术路线 | 第23-24页 |
第2章 共培养VSMC对可降解金属支架材料的影响 | 第24-34页 |
2.1 实验材料 | 第24-25页 |
2.1.1 实验材料及试剂 | 第24页 |
2.1.2 实验仪器 | 第24-25页 |
2.2 材料制备 | 第25页 |
2.3 血管支架材料和VSMC的共培养 | 第25页 |
2.4 材料学表征方法 | 第25-26页 |
2.4.1 扫描电子显微镜(SEM)和X射线衍射(XRD) | 第25-26页 |
2.4.2 质量变化和腐蚀速率 | 第26页 |
2.4.3 pH和离子浓度的测定 | 第26页 |
2.5 结果分析与讨论 | 第26-33页 |
2.5.1 纯镁和锌在腐蚀速率和前后质量的变化 | 第26-28页 |
2.5.2 材料表面腐蚀沉积物成份分析 | 第28-29页 |
2.5.3 材料的腐蚀形貌 | 第29-30页 |
2.5.4 微环境pH的变化 | 第30-31页 |
2.5.5 腐蚀微环境中的离子浓度的变化 | 第31-33页 |
2.6 本章小结 | 第33-34页 |
第三章 (不)可降解金属血管支架材料对VSMC的影响 | 第34-44页 |
3.1 实验材料 | 第34-35页 |
3.1.1 主要化学试剂 | 第34页 |
3.1.2 实验材料 | 第34-35页 |
3.2 实验仪器 | 第35页 |
3.3 材料制备 | 第35页 |
3.3.1 材料加工和预处理 | 第35页 |
3.4 VSMC和血管支架材料共培养 | 第35-36页 |
3.5 生物学表征 | 第36-37页 |
3.5.1 Calcein-AM染色观察细胞形态和密度 | 第36页 |
3.5.2 VSMC收缩和炎性表型基因的表达分析 | 第36-37页 |
3.6 统计学分析 | 第37页 |
3.7 结果讨论与分析 | 第37-43页 |
3.7.1 和血管支架材料共培养的VSMC的形态和密度 | 第37-40页 |
3.7.2 血管支架材料对共培养VSMC的表型的影响 | 第40-43页 |
3.8 本章小结 | 第43-44页 |
第四章 镁与锌浸提液对VSMC炎性表型的影响 | 第44-59页 |
4.1 实验材料 | 第44-45页 |
4.1.1 实验材料及试剂 | 第44页 |
4.1.2 实验仪器 | 第44-45页 |
4.2 材料的加工和浸提液的制备 | 第45页 |
4.2.1 镁锌材料的制备 | 第45页 |
4.2.2 浸提液的制备 | 第45页 |
4.3 试剂的配制 | 第45-46页 |
4.4 VSMC炎性表型的诱导及逆转 | 第46-48页 |
4.4.1 胆固醇诱导VSMC的炎性表型 | 第46页 |
4.4.2 镁、锌浸提液对胆固醇诱导VSMC炎性表型的影响 | 第46页 |
4.4.3 镁、锌离子对胆固醇诱导的VSMC炎性表型的影响 | 第46-47页 |
4.4.4 镁离子抑制剂对VSMC炎性表型的影响 | 第47页 |
4.4.5 基因的表达分析 | 第47页 |
4.4.6 细胞免疫荧光分析ICC | 第47页 |
4.4.7 蛋白表达分析 | 第47-48页 |
4.5 结果分析与讨论 | 第48-58页 |
4.5.1 含镁锌浸提液的细胞培养基的pH值和离子浓度 | 第48-49页 |
4.5.2 胆固醇诱导VSMC炎性表型 | 第49-50页 |
4.5.3 镁、锌的浸提液对VSMC炎性表型诱导的影响 | 第50-53页 |
4.5.4 镁、锌浸提液逆转VSMC炎性表型 | 第53-55页 |
4.5.5 Mg~(2+)、Zn~(2+)对胆固醇诱导炎性VSMC的影响 | 第55-56页 |
4.5.6 抑制剂(2-APB)削弱纯镁浸提液对VSMC炎性表型的抑制 | 第56-58页 |
4.6 本章小结 | 第58-59页 |
结论 | 第59-61页 |
致谢 | 第61-62页 |
参考文献 | 第62-69页 |
攻读硕士期间发表论文 | 第69-70页 |
常用缩略词一览表 | 第70页 |