| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 第一章 综述 | 第12-25页 |
| 1 n-3 多不饱和脂肪酸研究进展 | 第12-18页 |
| 1.1 n-3 多不饱和脂肪酸的分类 | 第12-13页 |
| 1.2 n-3 多不饱和脂肪酸的生理功能 | 第13-15页 |
| 1.3 n-3 多不饱和脂肪酸的合成 | 第15-17页 |
| 1.4 n-3 多不饱和脂肪酸的来源 | 第17-18页 |
| 2 裂殖壶菌研究进展 | 第18-22页 |
| 2.1 裂殖壶菌的分类及命名 | 第18-19页 |
| 2.2 裂殖壶菌的工业生产与诱变 | 第19-20页 |
| 2.3 裂殖壶菌的培养与微量元素 | 第20-22页 |
| 2.4 裂殖壶菌的遗传转化方法 | 第22页 |
| 3 Cre/loxP 位点特异性重组系统 | 第22-23页 |
| 4 研究目的及意义 | 第23-25页 |
| 第二章 裂殖壶菌培养条件优化及诱变选育 | 第25-41页 |
| 第一节 微量元素对裂殖壶菌的影响 | 第25-32页 |
| 1 材料与方法 | 第25-27页 |
| 2 结果与分析 | 第27-31页 |
| 3 讨论 | 第31-32页 |
| 第二节 裂殖壶菌的诱变选育及其性状分析 | 第32-41页 |
| 1 材料与方法 | 第32-34页 |
| 2 结果与分析 | 第34-39页 |
| 3 讨论 | 第39-41页 |
| 第三章 裂殖壶菌聚合酮酶 pks2 基因的克隆及分析 | 第41-57页 |
| 1 材料与方法 | 第41-45页 |
| 1.1 材料 | 第41-42页 |
| 1.2 实验方法 | 第42-45页 |
| 2 结果与分析 | 第45-56页 |
| 2.1 pks 2 中间部分 PCR 扩增及电泳结果 | 第45页 |
| 2.2 3’Walking 和 5’Walking 获得 pks 2 侧翼序列 | 第45-46页 |
| 2.3 测序结果 | 第46-52页 |
| 2.4 裂殖壶菌 PKS2 蛋白序列分子进化分析 | 第52-53页 |
| 2.5 PKS2 二级结构预测 | 第53-54页 |
| 2.6 PKS2 各结构域三级结构预测 | 第54-56页 |
| 3 讨论 | 第56-57页 |
| 第四章 Cre/lox P 系统在裂殖壶菌基因转化中的应用 | 第57-74页 |
| 1 材料 | 第57-59页 |
| 1.1 菌种及质粒 | 第57-58页 |
| 1.2 主要生化试剂及试剂盒 | 第58-59页 |
| 2 方法 | 第59-65页 |
| 2.1 目的片段的 PCR 克隆及载体构建 | 第59-60页 |
| 2.2 质粒构建 | 第60-62页 |
| 2.3 裂殖壶菌电转化 | 第62-63页 |
| 2.4 第一步转化阳性克隆的 PCR 筛选 | 第63页 |
| 2.5 第二步转化阳性克隆的 PCR 筛选 | 第63页 |
| 2.6 重组菌落的荧光检测 | 第63页 |
| 2.7 重组菌落的 Southern 杂交检测 | 第63-65页 |
| 3 实验结果 | 第65-73页 |
| 3.1 质粒构建 | 第65-68页 |
| 3.2 第一步转化阳性克隆的 PCR 筛选 | 第68-69页 |
| 3.3 第二步转化阳性克隆的筛选 | 第69-70页 |
| 3.4 重组菌落的荧光检测 | 第70-71页 |
| 3.5 重组菌落的 Southern 杂交检测 | 第71-73页 |
| 4 讨论 | 第73-74页 |
| 全文总结 | 第74-75页 |
| 参考文献 | 第75-80页 |
| 致谢 | 第80-81页 |
| 个人简历 | 第81页 |
| 发表的学术论文 | 第81-82页 |
