| 摘要 | 第3-4页 |
| Summary | 第4页 |
| 缩略语表 | 第5-9页 |
| 第一章 文献综述 | 第9-16页 |
| 1 口蹄疫概述 | 第9页 |
| 2 黏膜免疫概述 | 第9-10页 |
| 3 sIgA结构及功能 | 第10-12页 |
| 3.1 sIgA的结构 | 第10页 |
| 3.2 sIgA的生物学功能 | 第10-11页 |
| 3.3 sIgA抗体检测的意义 | 第11-12页 |
| 4 抗原表位 | 第12-13页 |
| 4.1 抗原表位概述 | 第12页 |
| 4.2 FMDV抗原表位研究进展 | 第12-13页 |
| 4.3 A型FMDV抗原位点 | 第13页 |
| 5 病毒多表位疫苗研究进展 | 第13-14页 |
| 5.1 病毒多表位疫苗概述 | 第13-14页 |
| 5.2 病毒多表位疫苗在动物疫苗研究开发中的应用 | 第14页 |
| 6 ELISA检测方法的介绍 | 第14-15页 |
| 7 本研究的目的与意义 | 第15-16页 |
| 试验部分 | 第16-38页 |
| 第二章 TB蛋白的诱导表达鉴定与鼠抗猪IgA单抗的标记 | 第16-24页 |
| 1 材料与方法 | 第16-21页 |
| 1.1 材料 | 第16-17页 |
| 1.2 多表位重组质粒的诱导表达 | 第17-18页 |
| 1.3 TB蛋白SDS-PAGE鉴定 | 第18页 |
| 1.4 TB蛋白Westernblot分析 | 第18-19页 |
| 1.5 TB蛋白的大量表达与纯化 | 第19-20页 |
| 1.6 用辣根过氧化物酶标记鼠抗猪IgA单克隆抗体 | 第20-21页 |
| 2 结果 | 第21-23页 |
| 2.1 TB蛋白的诱导表达结果 | 第21-22页 |
| 2.2 TB蛋白的纯化结果 | 第22-23页 |
| 3 讨论 | 第23-24页 |
| 第三章 猪A型FMDVsIgA间接ELISA方法的建立 | 第24-38页 |
| 1 材料与方法 | 第24-27页 |
| 1.1 材料 | 第24-25页 |
| 1.2 间接ELISA的操作程序 | 第25页 |
| 1.3 最佳包被抗原的选择 | 第25页 |
| 1.4 抗原最佳包被浓度及样品最佳稀释度的确定 | 第25-26页 |
| 1.5 最佳封闭液的选择 | 第26页 |
| 1.6 样品最佳孵育时间的确定 | 第26页 |
| 1.7 二抗最佳工作浓度的确定 | 第26页 |
| 1.8 二抗最佳工作时间的确定 | 第26页 |
| 1.9 底物作用时间的确定 | 第26页 |
| 1.10 阴性和阳性临界值判定 | 第26-27页 |
| 1.11 间接ELISA的敏感性、特异性试验 | 第27页 |
| 1.12 间接ELISA的重复性试验 | 第27页 |
| 2 结果 | 第27-36页 |
| 2.1 最佳包被抗原的确定 | 第27-29页 |
| 2.2 抗原最佳包被浓度及样品最佳稀释度的确定 | 第29页 |
| 2.3 最佳封闭液的确定 | 第29-30页 |
| 2.4 样品最佳孵育时间的确定 | 第30-31页 |
| 2.5 二抗最佳工作浓度的确定 | 第31-32页 |
| 2.6 二抗最佳工作时间的确定 | 第32-33页 |
| 2.7 底物作用时间的确定 | 第33-34页 |
| 2.8 阴性和阳性临界值判定结果 | 第34页 |
| 2.9 间接ELISA的敏感性、特异性试验结果 | 第34-36页 |
| 2.10 间接ELISA的重复性试验结果 | 第36页 |
| 3 讨论 | 第36-38页 |
| 全文结论 | 第38-39页 |
| 参考文献 | 第39-44页 |
| 致谢 | 第44-45页 |
| 作者简介 | 第45-46页 |
| 导师简介 | 第46-47页 |
