| 摘要 | 第3-7页 |
| ABSTRACT | 第7-10页 |
| 中英文缩略词表 | 第13-14页 |
| 第1章 引言 | 第14-17页 |
| 第2章 体外实验 | 第17-29页 |
| 2.1 实验材料 | 第17-20页 |
| 2.1.1 实验动物及细胞系来源 | 第17页 |
| 2.1.2 主要试剂和仪器 | 第17-19页 |
| 2.1.3 主要试剂的配制 | 第19-20页 |
| 2.2 体外实验方法 | 第20-28页 |
| 2.2.1 器材的准备 | 第20页 |
| 2.2.2 iPSCs 的培养及向 NSC 的定向诱导分化 | 第20-22页 |
| 2.2.3 iPSCs 向 NSC 定向分化过程中 microRNA 的表达变化 | 第22-24页 |
| 2.2.4 Notch 信号对 iPSCs 向 NSC 分化的影响 | 第24-28页 |
| 2.3 统计学分析 | 第28-29页 |
| 第3章 体内实验 | 第29-36页 |
| 3.1 实验材料 | 第29-31页 |
| 3.1.1 实验动物 | 第29页 |
| 3.1.2 主要试剂和仪器 | 第29-30页 |
| 3.1.3 主要试剂的配制 | 第30-31页 |
| 3.2 体内实验方法 | 第31-35页 |
| 3.2.1 器材的准备 | 第31页 |
| 3.2.2 人 iPSCs 的培养及向 NSC 定向诱导分化 | 第31页 |
| 3.2.3 人 iPSCs 来源的 NSC 立体定向移植于大鼠 MCAO 模型脑内 | 第31-33页 |
| 3.2.4 各实验组大鼠神经功能评分 | 第33-34页 |
| 3.2.5 移植细胞在脑组织内的存活及分布、分化的检测 | 第34-35页 |
| 3.3 统计学分析 | 第35-36页 |
| 第4章 结果 | 第36-47页 |
| 4.1 体外实验结果 | 第36-42页 |
| 4.1.1 饲养层细胞（MEF）的形态特点 | 第36页 |
| 4.1.2 人 iPSCs 的形态特点及鉴定 | 第36页 |
| 4.1.3 人 iPSCs 经 RA 结合无血清培养基诱导后的细胞形态及鉴定 | 第36页 |
| 4.1.4 人 iPSCs 向 NSC 定向诱导分化过程中 microRNA 的表达变化 | 第36-37页 |
| 4.1.5 Notch 信号对人 iPSCs 向 NSC 诱导分化的影响 | 第37-42页 |
| 4.2 体内实验结果 | 第42-47页 |
| 4.2.1 CM-DiI 标记 iPSCs 来源的 NSC 的效果 | 第42页 |
| 4.2.2 MCAO 模型的制备情况 | 第42页 |
| 4.2.3 各实验组大鼠神经功能测评结果 | 第42-45页 |
| 4.2.4 脑立体定向移植后细胞在脑组织内的分布及分化情况 | 第45-47页 |
| 第5章 讨论 | 第47-57页 |
| 5.1 iPSCs 的生物学特性 | 第47-48页 |
| 5.2 iPSCs 的 NSC 分化 | 第48-50页 |
| 5.3 iPSCs 与缺血性脑卒中 | 第50-52页 |
| 5.4 Notch 信号通路与神经分化 | 第52-54页 |
| 5.5 MicroRNA 与神经分化 | 第54-57页 |
| 第6章 结论 | 第57-58页 |
| 致谢 | 第58-59页 |
| 参考文献 | 第59-64页 |
| 附图 | 第64-72页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第72-73页 |
| 综述 | 第73-81页 |
| 参考文献 | 第79-81页 |
