| 摘要 | 第6-8页 |
| Abstract | 第8-9页 |
| 插图和附表清单 | 第10-12页 |
| 缩略词和术语表 | 第12-17页 |
| 第1章 绪论 | 第17-30页 |
| 1.1 研究背景 | 第17-28页 |
| 1.1.1 卤虫概况 | 第17-19页 |
| 1.1.2 组蛋白修饰 | 第19-20页 |
| 1.1.3 组蛋白H3第56位赖氨酸(H3K56)乙酰化研究概况 | 第20-26页 |
| 1.1.4 SLK的研究概况 | 第26-28页 |
| 1.2 展望 | 第28页 |
| 1.3 研究目的、方法、意义 | 第28-30页 |
| 第2章 组蛋白H3第56位赖氨酸(H3K56)乙酰化在卤虫休眠形成和终止过程中的特征分析 | 第30-56页 |
| 摘要 | 第30-31页 |
| 2.1 引言 | 第31-32页 |
| 2.2 材料 | 第32-33页 |
| 2.1.1 实验材料 | 第32-33页 |
| 2.1.2 主要试剂 | 第33页 |
| 2.1.3 主要仪器 | 第33页 |
| 2.3 方法 | 第33-43页 |
| 2.3.1 BrdU的标记与检测 | 第33-35页 |
| 2.3.2 DAPI染核 | 第35页 |
| 2.3.3 总RNA和总蛋白的抽提 | 第35-36页 |
| 2.3.4 组蛋白提取 | 第36-37页 |
| 2.3.5 细胞组分分离 | 第37页 |
| 2.3.6 Western blotting | 第37-38页 |
| 2.3.7 cDNA的合成 | 第38-39页 |
| 2.3.8 分子克隆 | 第39-40页 |
| 2.3.9 Virtual Northern blotting | 第40-43页 |
| 2.4 结果 | 第43-52页 |
| 2.4.1 卤虫胚胎在两种生殖模式胚胎发育过程中的细胞分裂活性 | 第43-45页 |
| 2.4.2 H3K56乙酰化在卤虫两种生殖模式的胚胎发育过程中的特征分析 | 第45-47页 |
| 2.4.3 Rtt109和Asf1在卤虫两种生殖模式的胚胎发育过程中的mRNA表达特征 | 第47-48页 |
| 2.4.4 卤虫休眠胚胎终止休眠和孵化过程中的细胞分裂活性 | 第48-50页 |
| 2.4.5 H3K56乙酰化在卤虫休眠胚胎终止休眠和孵化过程中的特征分析 | 第50-52页 |
| 2.4.6 ArRtt109和ArAsf1在休眠胚胎终止休眠和孵化过程中的mRNA表达特征 | 第52页 |
| 2.5 小结与讨论 | 第52-56页 |
| 第3章 宫颈癌细胞中H3K56乙酰化累积对细胞周期的影响 | 第56-66页 |
| 摘要 | 第56页 |
| 3.1 前言 | 第56-57页 |
| 3.2 材料 | 第57页 |
| 3.2.1 实验材料 | 第57页 |
| 3.2.2 主要试剂 | 第57页 |
| 3.2.3 主要仪器 | 第57页 |
| 3.3 方法 | 第57-61页 |
| 3.3.1 细胞培养及转染 | 第57-58页 |
| 3.3.2 流式细胞术 | 第58-59页 |
| 3.3.3 siRNA干涉 | 第59-61页 |
| 3.3.4 半定量PCR | 第61页 |
| 3.3.5 组蛋白提取 | 第61页 |
| 3.3.6 细胞组分分离 | 第61页 |
| 3.3.7 Western blotting | 第61页 |
| 3.4 结果 | 第61-65页 |
| 3.4.1 去乙酰化酶活性抑制对H3K56乙酰化分布的影响 | 第62-63页 |
| 3.4.2 去乙酰化酶活性抑制对细胞周期的影响 | 第63-65页 |
| 3.5 小结与讨论 | 第65-66页 |
| 第4章 卤虫孵化过程中H3K56乙酰化累积对发育的影响 | 第66-74页 |
| 摘要 | 第66页 |
| 4.1 前言 | 第66-67页 |
| 4.2 材料 | 第67页 |
| 4.2.1 实验材料 | 第67页 |
| 4.2.2 主要试剂 | 第67页 |
| 4.2.3 主要仪器 | 第67页 |
| 4.3 方法 | 第67-68页 |
| 4.3.1 BrdU标记与检测 | 第68页 |
| 4.3.2 细胞组分分离 | 第68页 |
| 4.3.3 组蛋白提取 | 第68页 |
| 4.3.4 Western blotting | 第68页 |
| 4.4 结果 | 第68-71页 |
| 4.5 小结与讨论 | 第71-74页 |
| 第5章 SLK在卤虫休眠过程中的表达特征分析 | 第74-90页 |
| 镝要 | 第74页 |
| 5.1 引言 | 第74-75页 |
| 5.2 材料 | 第75-76页 |
| 5.2.1 实验材料 | 第75页 |
| 5.2.2 主要试剂 | 第75-76页 |
| 5.2.3 主要仪器 | 第76页 |
| 5.3 方法 | 第76-81页 |
| 5.3.1 基因的分子克隆 | 第76-79页 |
| 5.3.2 荧光定量PCR | 第79-80页 |
| 5.3.3 Western blotting | 第80页 |
| 5.3.4 细胞核质分离 | 第80-81页 |
| 5.4 结果 | 第81-88页 |
| 5.4.1 ArSLK序列获得与特征分析 | 第81-84页 |
| 5.4.2 ArSLK的表达特征分析 | 第84-86页 |
| 5.4.3 ArSLK在休眠形成和终止过程中的亚细胞定位 | 第86-87页 |
| 5.4.4 ArSLK在抵抗胁迫过程中的亚细胞定位变化 | 第87-88页 |
| 5.5 小结与讨论 | 第88-90页 |
| 第6章 结论与展望 | 第90-92页 |
| 6.1 结论 | 第90-91页 |
| 6.2 展望 | 第91-92页 |
| 本研究的创新点 | 第92-93页 |
| 参考文献 | 第93-101页 |
| 附录一 常用试剂配制一览表 | 第101-105页 |
| 附录二 作者简历 | 第105-106页 |
| 致谢 | 第106页 |
