中文摘要 | 第1-12页 |
英文摘要 | 第12-15页 |
1 前言 | 第15-33页 |
·国内外研究现状分析 | 第16-20页 |
·成熟促进因子与细胞周期调控 | 第16-17页 |
·MPF 与卵母细胞减数分裂 | 第17-18页 |
·丝裂原活化蛋白激酶与卵母细胞减数分裂 | 第18-20页 |
·小鼠卵母细胞第一次减数分裂纺锤体迁移 | 第20-25页 |
·肌动蛋白纤维与卵母细胞纺锤体迁移 | 第21-24页 |
·MAPK | 第24-25页 |
·纺锤体组装检验点 | 第25-31页 |
·SAC 与细胞分裂 | 第25-30页 |
·SAC 相关蛋白的作用机制 | 第25-29页 |
·关闭SAC 的相关机制 | 第29-30页 |
·SAC 与卵母细胞第一次减数分裂 | 第30-31页 |
·重构卵母细胞研究现状 | 第31-32页 |
·本实验研究目的和意义 | 第32-33页 |
2 材料和方法 | 第33-40页 |
·主要试剂及配制 | 第33页 |
·实验小鼠 | 第33-34页 |
·卵母细胞和初级精母细胞获取 | 第34页 |
·卵母细胞的获取 | 第34页 |
·初级精母细胞获取 | 第34页 |
·显微操作 | 第34-36页 |
·GV 卵母细胞的去核和初级精母细胞的注射 | 第34-35页 |
·PS+GV 重构卵母细胞中 Anti-Mad2 抗体的注射 | 第35页 |
·GVT 卵母细胞的获得 | 第35-36页 |
·卵母细胞体外成熟和激活 | 第36-37页 |
·卵母细胞排极体时间和成熟观察 | 第36页 |
·冈田酸或者U0126 处理 | 第36-37页 |
·卵母细胞的激活 | 第37页 |
·chromosome spread 的制备 | 第37页 |
·MPF 和 MAPK 活性分析 | 第37-38页 |
·免疫荧光显微检测 | 第38-39页 |
·数据统计分析 | 第39-40页 |
3 结果与分析 | 第40-55页 |
·重构卵母细胞大极体形成及调控机理研究 | 第40-45页 |
·重构卵母细胞体外成熟后有大极体形成 | 第40页 |
·重构卵母细胞成熟进程与GVT 卵无显著差异 | 第40-41页 |
·重构卵母细胞大极体形成与MAPK 活性无关 | 第41-43页 |
·大极体与小极体重构卵母细胞 MPF 和 MAPK 活性无显著差异 | 第41-42页 |
·成熟期间使用U0126 或OA 处理对PS+GV 重构卵母细胞第一极体大小没影响 | 第42-43页 |
·给予足够时间供纺锤体迁移对重构卵母细胞第一极体大小没有影响 | 第43页 |
·注核位置不影响重构卵母细胞第一极体的大小 | 第43-44页 |
·重构卵母细胞成熟期间皮质颗粒和肌动蛋白微丝分布异常 | 第44-45页 |
·重构卵母细胞收缩环定位异常 | 第45页 |
·重构卵母细胞染色体的凝集、分离及调控机理研究 | 第45-48页 |
·重构卵母细胞的染色体凝集和分离 | 第45-47页 |
·重构卵母细胞染色体凝集异常 | 第45-46页 |
·重构卵母细胞染色质/体分离不均等 | 第46-47页 |
·不同极体大小重构卵母细胞染色质/体分离不均等程度没有差异 | 第47页 |
·重构卵母细胞染色质/体分离时产生了染色体桥 | 第47-48页 |
·重构卵母细胞纺锤体检验点的激活 | 第48-49页 |
·Nocodazole 处理抑制重构卵母细胞的成熟 | 第48-49页 |
·注射 Anti-Mad2 抗体加速重构卵母细胞成熟进程 | 第49页 |
·重构卵母细胞的第一极体退化 | 第49-53页 |
·重构卵母细胞的第一极体的退化 | 第49-50页 |
·MAPK 活性对重构卵母细胞第一极体退化的作用 | 第50-51页 |
·重构卵母细胞成熟期间p-MAPK 的分布 | 第51页 |
·成熟重构卵母细胞p-MAPK 定位观察 | 第51-52页 |
·大极体和小极体重构卵母细胞中p-MAPK 的分布 | 第52-53页 |
·重构卵母细胞的激活 | 第53-55页 |
4 讨论 | 第55-63页 |
·重构卵母细胞的成熟后出现大极体 | 第55-57页 |
·重构卵母细胞出现染色体凝集和分离的异常 | 第57-60页 |
·重构卵母细胞p-MAPK 的分离与激活与极体退化的关系 | 第60-61页 |
·重构卵母细胞出现分裂沟定位的异常 | 第61-63页 |
5 结论 | 第63-64页 |
参考文献 | 第64-83页 |
7 致谢 | 第83-84页 |
8 个人简介 | 第84-85页 |
博士学位论文内容简介及自评 | 第85页 |