| 摘要 | 第4-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 1 引言 | 第12-19页 |
| 1.1 着床期母胎界面微环境免疫调控 | 第12-14页 |
| 1.2 着床期子宫内膜细胞的体外培养 | 第14页 |
| 1.3 细胞凋亡与胚胎着床障碍的相关分子机制研究进展 | 第14-15页 |
| 1.3.1 LPS 与细胞凋亡的相关研究 | 第14-15页 |
| 1.3.2 槲皮素与细胞凋亡的相关研究 | 第15页 |
| 1.4 TLR4/NF-ΚB 信号转导通路与胚胎着床障碍的相关分子机制研究进展 | 第15-17页 |
| 1.4.1 LPS 介导 TLR4/NF-κB 信号转导通路研究 | 第16页 |
| 1.4.2 槲皮素与 TLR4/NF-κB 信号转导通路的相关研究 | 第16-17页 |
| 1.5 TH1/TH2 因子与胚胎着床障碍的相关分子机制研究进展 | 第17-19页 |
| 1.5.1 LPS 与 Th1/Th2 因子的相关研究 | 第17-18页 |
| 1.5.2 槲皮素与 Th1/Th2 因子的相关研究 | 第18-19页 |
| 2 材料与方法 | 第19-33页 |
| 2.1 试验动物 | 第19页 |
| 2.2 试验药品 | 第19页 |
| 2.3 主要仪器 | 第19-20页 |
| 2.4 体内小鼠胚胎着床障碍模型的建立 | 第20-21页 |
| 2.4.1 试剂配制 | 第20-21页 |
| 2.4.2 动物处理 | 第21页 |
| 2.4.3 动物分组 | 第21页 |
| 2.4.4 胚胎着床率和子宫重量计算 | 第21页 |
| 2.5 HE 检测槲皮素对 LPS 作用小鼠子宫组织病理学变化的影响 | 第21-22页 |
| 2.5.1 试剂配制 | 第21-22页 |
| 2.5.2 动物分组 | 第22页 |
| 2.5.3 HE 染色小鼠子宫 | 第22页 |
| 2.6 免疫组化检测槲皮素对 LPS 诱导小鼠子宫中 BCL-2/BAX 表达的影响 | 第22-23页 |
| 2.6.1 试剂配制 | 第22-23页 |
| 2.6.2 动物分组 | 第23页 |
| 2.6.3 免疫组化检测槲皮素对 LPS 诱导小鼠子宫中 Bcl-2/Bax 表达的影响 | 第23页 |
| 2.7 着床期小鼠子宫内膜细胞的体外培养 | 第23-24页 |
| 2.7.1 试剂配制 | 第23-24页 |
| 2.7.2 着床期小鼠子宫内膜细胞的分离 | 第24页 |
| 2.8 体外小鼠子宫内膜细胞炎症模型的建立 | 第24-26页 |
| 2.8.1 LPS 致炎症作用剂量筛选试验 | 第24-25页 |
| 2.8.2 LPS 致炎症作用时间筛选试验 | 第25页 |
| 2.8.3 ELISA 检测培养上清中炎症因子 IL-l0、TNF-α含量 | 第25-26页 |
| 2.9 槲皮素对 LPS 诱导小鼠子宫内膜细胞病理学变化的影响 | 第26页 |
| 2.9.1 细胞处理 | 第26页 |
| 2.9.2 细胞 HE 染色 | 第26页 |
| 2.10 WESTERN BLOTTING 检测槲皮素对 LPS 诱导小鼠子宫内膜细胞 BCL-2/BAX 表达的影响 | 第26-30页 |
| 2.10.1 试剂配制 | 第26-28页 |
| 2.10.2 收集蛋白样品 | 第28页 |
| 2.10.3 蛋白定量 | 第28-29页 |
| 2.10.4 Western blotting 检测槲皮素对 LPS 诱导小鼠子宫内膜细胞中 Bcl-2/Bax 蛋白表达的影响 | 第29-30页 |
| 2.11 槲皮素对 LPS 介导小鼠子宫内膜细胞中 TLR4/NF-ΚB 信号通路的影响 | 第30-32页 |
| 2.11.1 试剂配制 | 第30页 |
| 2.11.2 细胞加药处理 | 第30-31页 |
| 2.11.3 细胞免疫荧光染色 | 第31页 |
| 2.11.4 Western blotting 检测槲皮素对 LPS 诱导小鼠子宫内膜细胞中 TLR4 和 NF-κB 蛋白的影响 | 第31-32页 |
| 2.12 ELISA 检测槲皮素对 LPS 诱导子宫内膜细胞培养上清中 IL-10 和 TNF-Α的影响 | 第32页 |
| 2.12.1 收集培养上清 | 第32页 |
| 2.12.2 ELISA 检测槲皮素对 LPS 诱导子宫内膜细胞培养上清中 IL-10 和 TNF-α的影响 | 第32页 |
| 2.13 统计学处理 | 第32-33页 |
| 3 结果 | 第33-44页 |
| 3.1 体内试验 | 第33-37页 |
| 3.1.1 不同浓度 LPS 对胚胎着床率和子宫重量的影响 | 第33-34页 |
| 3.1.2 槲皮素对 LPS 诱导小鼠子宫病理学变化的影响 | 第34-35页 |
| 3.1.3 槲皮素对 LPS 诱导小鼠子宫中 Bcl-2/Bax 凋亡蛋白表达的影响 | 第35-37页 |
| 3.2 体外试验 | 第37-44页 |
| 3.2.1 着床期小鼠子宫内膜细胞的体外培养 | 第37-38页 |
| 3.2.2 体外小鼠子宫内膜细胞炎症模型的建立 | 第38-39页 |
| 3.2.3 槲皮素对 LPS 诱导小鼠子宫内膜细胞病理形态变化的影响 | 第39-40页 |
| 3.2.4 槲皮素对 LPS 诱导小鼠子宫内膜细胞中 Bcl-2/Bax 凋亡蛋白表达的影响 | 第40-41页 |
| 3.2.5 槲皮素对 LPS 介导小鼠子宫内膜细胞中 TLR4/NF-κB 信号通路的影响 | 第41-42页 |
| 3.2.6 槲皮素对 LPS 诱导小鼠子宫内膜细胞中 IL-10 和 TNF-α分泌的影响 | 第42-44页 |
| 4 讨论 | 第44-50页 |
| 4.1 着床期小鼠子宫内膜细胞的原代培养 | 第44页 |
| 4.2 LPS 致胚胎着床障碍的分子机制 | 第44-47页 |
| 4.2.1 LPS 对着床期胚胎和子宫的影响 | 第44-45页 |
| 4.2.2 LPS 和着床期子宫内膜细胞凋亡的关系 | 第45页 |
| 4.2.3 LPS 影响着床期子宫内膜细胞中 TLR4/NF-κB 信号通路的研究 | 第45-46页 |
| 4.2.4 LPS 作用着床期子宫内膜细胞后 Th1/Th2 的变化 | 第46-47页 |
| 4.3 槲皮素对子宫内膜的保护作用研究 | 第47-50页 |
| 4.3.1 槲皮素与胚胎着床 | 第47页 |
| 4.3.2 槲皮素对小鼠子宫内膜细胞凋亡的影响 | 第47-48页 |
| 4.3.3 槲皮素对小鼠子宫内膜细胞中 NF-κB 和 TLR4 蛋白的影响 | 第48-49页 |
| 4.3.4 槲皮素对小鼠子宫内膜细胞中 Th1/Th2 的影响 | 第49-50页 |
| 5 结论 | 第50-51页 |
| 参考文献 | 第51-58页 |
| 在读期间发表的论文情况 | 第58-59页 |
| 作者简介 | 第59-60页 |
| 致谢 | 第60-61页 |
