| 摘要 | 第8-12页 |
| Abstract | 第12-17页 |
| 缩略语表 | 第18-19页 |
| 文中水产动物拉丁学名、英文及中文名对照表 | 第19-22页 |
| 第一章 文献综述 | 第22-50页 |
| 1.1 鱼类早期阶段的生长模式及异速生长 | 第22-24页 |
| 1.2 鱼类早期阶段核酸及蛋白含量的变化 | 第24-26页 |
| 1.3 鱼类早期阶段消化酶活性的变化 | 第26-29页 |
| 1.4 鱼类早期阶段的骨骼畸形 | 第29-32页 |
| 1.5 氨氮对鱼类的毒性 | 第32-36页 |
| 1.5.1 介质环境对氨氮毒性的影响 | 第34页 |
| 1.5.2 运动对氨氮毒性的影响 | 第34-35页 |
| 1.5.3 摄食对氨氮毒性的影响 | 第35-36页 |
| 1.6 鱼类的氨耐受策略 | 第36-47页 |
| 1.6.1 合成谷氨酰胺 | 第36-38页 |
| 1.6.2 合成尿素排出 | 第38-40页 |
| 1.6.3 NH_4~+排泄增强 | 第40-41页 |
| 1.6.4 Rh蛋白的作用 | 第41-42页 |
| 1.6.5 降低环境pH | 第42-43页 |
| 1.6.6 NH_3挥发和体表碱化 | 第43-44页 |
| 1.6.7 降低体内氨的生成 | 第44-45页 |
| 1.6.8 特定氨基酸代谢生成丙氨酸 | 第45-46页 |
| 1.6.9 组织高氨耐受性 | 第46-47页 |
| 1.7 大鳞副泥鳅的研究进展 | 第47-48页 |
| 1.8 本研究目的与意义 | 第48-50页 |
| 第二章 大鳞副泥鳅早期发育阶段的生长模式 | 第50-63页 |
| 2.1 材料方法 | 第50-52页 |
| 2.1.1 仔鱼养殖 | 第50-51页 |
| 2.1.2 取样 | 第51-52页 |
| 2.1.3 数据分析 | 第52页 |
| 2.2 结果 | 第52-60页 |
| 2.2.1 体重、全长、日龄之间的关系 | 第52页 |
| 2.2.2 异速生长 | 第52-60页 |
| 2.3 讨论 | 第60-63页 |
| 2.3.1 大鳞副泥鳅的生长特点 | 第60页 |
| 2.3.2 大鳞副泥鳅的异速生长 | 第60-63页 |
| 第三章 大鳞副泥鳅早期发育阶段核酸及蛋白的变化 | 第63-76页 |
| 3.1 材料方法 | 第64-65页 |
| 3.1.1 试验鱼养殖 | 第64页 |
| 3.1.2 样品采集 | 第64-65页 |
| 3.1.3 RNA，DNA和蛋白含量测定 | 第65页 |
| 3.1.4 数据分析 | 第65页 |
| 3.2 结果 | 第65-74页 |
| 3.2.1 生长 | 第65-67页 |
| 3.2.2 RNA，DNA及蛋白含量的变化 | 第67-69页 |
| 3.2.3 RNA-DNA比和protein-DNA比的变化 | 第69-70页 |
| 3.2.4 生长指标与生化成分之间的关系 | 第70-71页 |
| 3.2.5 RNA-DNA比及protein-DNA比与生长率之间的相关性 | 第71-74页 |
| 3.3 讨论 | 第74-76页 |
| 第四章 大鳞副泥鳅早期发育阶段消化酶活力的变化 | 第76-86页 |
| 4.1 材料方法 | 第76-78页 |
| 4.1.1 试验鱼养殖 | 第76-77页 |
| 4.1.2 取样 | 第77页 |
| 4.1.3 消化酶测定 | 第77-78页 |
| 4.1.4 数据分析 | 第78页 |
| 4.2 结果 | 第78-82页 |
| 4.2.1 仔鱼生长 | 第78-79页 |
| 4.2.2 胰腺酶活力变化 | 第79-80页 |
| 4.2.3 胃腺酶活力变化 | 第80-81页 |
| 4.2.4 肠酶活力变化 | 第81-82页 |
| 4.3 讨论 | 第82-86页 |
| 第五章 大鳞副泥鳅早期阶段骨骼畸形的研究 | 第86-94页 |
| 5.1 材料方法 | 第87-88页 |
| 5.1.1 试验鱼养殖 | 第87页 |
| 5.1.2 取样 | 第87页 |
| 5.1.3 骨骼染色 | 第87-88页 |
| 5.1.4 观察与拍照 | 第88页 |
| 5.2 结果 | 第88-91页 |
| 5.2.1 生长 | 第88-89页 |
| 5.2.2 骨骼畸形 | 第89-91页 |
| 5.3 讨论 | 第91-94页 |
| 第六章 空气和氨氮暴露下大鳞副泥鳅体内氨的累积 | 第94-106页 |
| 6.1 材料方法 | 第95-97页 |
| 6.1.1 试验鱼 | 第95页 |
| 6.1.2 试验设计 | 第95-96页 |
| 6.1.2.1 氨氮暴露 | 第95-96页 |
| 6.1.2.2 空气暴露 | 第96页 |
| 6.1.3 取样及处理 | 第96页 |
| 6.1.4 样品测定 | 第96-97页 |
| 6.1.5 数据分析 | 第97页 |
| 6.2 结果 | 第97-102页 |
| 6.2.1 氨含量 | 第97-99页 |
| 6.2.2 尿素含量 | 第99-100页 |
| 6.2.3 转氨酶活性 | 第100-102页 |
| 6.3 讨论 | 第102-106页 |
| 第七章 谷氨酰胺在大鳞副泥鳅应对氨氮和空气暴露中的作用 | 第106-116页 |
| 7.1 材料方法 | 第107-108页 |
| 7.1.1 试验鱼 | 第107页 |
| 7.1.2 试验设计 | 第107页 |
| 7.1.3 取样 | 第107页 |
| 7.1.4 样品测定 | 第107-108页 |
| 7.1.5 数据分析 | 第108页 |
| 7.2 结果 | 第108-113页 |
| 7.2.1 组织谷氨酰胺含量 | 第108-110页 |
| 7.2.2 组织谷氨酰胺合成酶活性变化 | 第110-112页 |
| 7.2.3 组织谷氨酸脱氢酶活性变化 | 第112-113页 |
| 7.3 讨论 | 第113-116页 |
| 第八章 氨氮和空气暴露下大鳞副泥鳅体表碱化及氨气挥发的研究 | 第116-125页 |
| 8.1 材料方法 | 第117-118页 |
| 8.1.1 试验鱼 | 第117页 |
| 8.1.2 试验鱼氨气排放量的确定 | 第117-118页 |
| 8.1.2.1 氨氮暴露 | 第117页 |
| 8.1.2.2 空气暴露 | 第117-118页 |
| 8.1.3 水样、试验鱼体表及肠道pH的测定 | 第118页 |
| 8.1.4 数据分析 | 第118页 |
| 8.2 结果 | 第118-123页 |
| 8.3 讨论 | 第123-125页 |
| 参考文献 | 第125-165页 |
| 附录 | 第165-166页 |
| 致谢 | 第166-167页 |
