| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 缩写表 | 第9-13页 |
| 第一章 引言 | 第13-47页 |
| 1.1 硅藻概述 | 第13-18页 |
| 1.1.1 硅藻的生态意义和经济价值 | 第13-14页 |
| 1.1.2 硅藻代表性物种—三角褐指藻 | 第14-18页 |
| 1.2 微藻产油概述 | 第18-35页 |
| 1.2.1 产油微藻的筛选方法 | 第18-26页 |
| 1.2.2 微藻油脂的生物合成过程 | 第26-29页 |
| 1.2.3 影响微藻油脂合成的因素 | 第29-35页 |
| 1.3 真核微藻中心碳代谢 | 第35-40页 |
| 1.3.1 中心碳代谢网络的组成 | 第35-39页 |
| 1.3.2 中心碳代谢网络对不同培养条件的响应 | 第39-40页 |
| 1.4 微藻光合固碳方式 | 第40-45页 |
| 1.4.1 微藻CO_2浓缩机制(CCM) | 第40-42页 |
| 1.4.2 硅藻CCMs及C_4光合固碳机制假说 | 第42-45页 |
| 1.5 论文研究内容与技术路线 | 第45-47页 |
| 1.5.1 研究内容 | 第45-46页 |
| 1.5.2 技术路线 | 第46-47页 |
| 第二章 快速检测三角褐指藻胞内中性脂含量方法的建立 | 第47-61页 |
| 引言 | 第47-48页 |
| 2.1 材料与方法 | 第48-50页 |
| 2.2.1 藻种与培养方法 | 第48页 |
| 2.2.2 Nile Red和BODIPY 505/515染色预试验 | 第48页 |
| 2.2.3 Nile Red染色条件优化 | 第48-49页 |
| 2.2.4 BODIPY 505/515染色条件优化 | 第49页 |
| 2.2.5 正常及缺氮培养藻细胞生长速度和中性脂相对荧光值测定 | 第49-50页 |
| 2.2.6 棒状薄层色谱/氢火焰离子检测器(TLC/FID)测定中性脂含量 | 第50页 |
| 2.2.7 激光共聚焦显微镜观察与拍照 | 第50页 |
| 2.2.8 数据分析 | 第50页 |
| 2.2 结果 | 第50-58页 |
| 2.2.1 Nile red和BODIPY 505/515染色方法优化 | 第50-52页 |
| 2.2.2 生长速度测定 | 第52-53页 |
| 2.2.3 Nile red和BODIPY 505/515染色法测定中性脂相对荧光值 | 第53-56页 |
| 2.2.4 中性脂含量测定 | 第56-57页 |
| 2.2.5 激光共聚焦显微镜观察 | 第57-58页 |
| 2.3 讨论 | 第58-61页 |
| 2.3.1 细胞壁结构和组成影响染料通透性 | 第58-59页 |
| 2.3.2 三角褐指藻Nile red与BODIPY 505/515染色方法的建立 | 第59页 |
| 2.3.3 Nile red与BODIPY 505/515染色方法比较 | 第59-61页 |
| 第三章 磷酸戊糖途经参与三角褐指藻对高浓度CO_2的响应 | 第61-87页 |
| 引言 | 第61-62页 |
| 3.1 材料与方法 | 第62-70页 |
| 3.1.1 藻种培养 | 第62页 |
| 3.1.2 CO_2通气培养 | 第62-63页 |
| 3.1.3 生长及光合活性测定 | 第63页 |
| 3.1.4 中性脂及总脂含量测定 | 第63页 |
| 3.1.5 酶活测定 | 第63-65页 |
| 3.1.6 实时荧光定量PCR检测 | 第65-67页 |
| 3.1.7 色素提取及检测 | 第67页 |
| 3.1.8 淀粉含量测定 | 第67-69页 |
| 3.1.9 水溶性蛋白质提取 | 第69页 |
| 3.1.10 蛋白定量 | 第69-70页 |
| 3.1.11 数据分析 | 第70页 |
| 3.2 结果 | 第70-83页 |
| 3.2.1 生长速度、光合活性以及pH在不同CO_2浓度下的变化 | 第70-73页 |
| 3.2.2 不同CO_2浓度培养下三角褐指藻中性脂及油脂的变化 | 第73-76页 |
| 3.2.3 不同CO_2浓度下胞内含物的变化 | 第76-77页 |
| 3.2.4 卡尔文循环对不同浓度CO_2的响应 | 第77-80页 |
| 3.2.5 磷酸戊糖途径对不同浓度CO_2的响应 | 第80-81页 |
| 3.2.6 三羧酸循环在不同浓度CO_2下的变化 | 第81-82页 |
| 3.2.7 淀粉含量在不同CO_2浓度下的变化 | 第82-83页 |
| 3.3 讨论 | 第83-87页 |
| 3.3.1 三角褐指藻光合作用应对不同浓度CO_2的方式 | 第83-84页 |
| 3.3.2 High-CO_2对胞内C/N比率的影响 | 第84页 |
| 3.3.3 三角褐指藻应对不同浓度CO_2时淀粉代谢的情况 | 第84-85页 |
| 3.3.4 氧化型磷酸戊糖途径参与三角褐指藻对不同浓度CO_2的响应 | 第85-87页 |
| 第四章 不同浓度CO_2培养下三角褐指藻光合固碳方式的变化 | 第87-99页 |
| 引言 | 第87-88页 |
| 4.1 材料与方法 | 第88-91页 |
| 4.1.1 藻体培养 | 第88页 |
| 4.1.2 CO_2通气培养 | 第88页 |
| 4.1.3 生长速度及光合活性测定 | 第88页 |
| 4.1.4 酶活测定 | 第88-90页 |
| 4.1.5 实时荧光定量PCR | 第90-91页 |
| 4.2 结果与讨论 | 第91-99页 |
| 4.2.1 生长速度及光合活性的变化 | 第91-92页 |
| 4.2.2 不同浓度CO_2培养下C_4途径相关酶的酶活变化 | 第92-96页 |
| 4.2.3 C_4途径相关酶在mRNA水平表达的差异 | 第96-99页 |
| 结论 | 第99-100页 |
| 论文的后续研究工作与展望 | 第100-101页 |
| 参考文献 | 第101-125页 |
| 作者简历 | 第125-126页 |
| 已发表或完成的论文目录 | 第126页 |
