| 中文摘要 | 第3-4页 |
| Abstract | 第4-5页 |
| 主要符号表 | 第9-10页 |
| 第一章 前言 | 第10-24页 |
| 1.1 肿瘤转移的研究现状 | 第10-14页 |
| 1.1.1 肿瘤转移简介及危害 | 第10-11页 |
| 1.1.2 循环肿瘤细胞简介 | 第11-12页 |
| 1.1.3 肿瘤转移的方式及机制 | 第12页 |
| 1.1.4 国内外肿瘤术后再转移的治疗现状 | 第12-14页 |
| 1.2 九里香研究进展 | 第14-20页 |
| 1.2.1 九里香属植物的资源分布 | 第14页 |
| 1.2.2 九里香的植物学特征 | 第14-15页 |
| 1.2.3 九里香的化学成分 | 第15-17页 |
| 1.2.4 九里香的药理作用 | 第17-19页 |
| 1.2.5 九里香的分析方法研究 | 第19-20页 |
| 1.3 黄酮与肿瘤治疗的关系 | 第20-22页 |
| 1.3.1 黄酮类化合物简介 | 第20-21页 |
| 1.3.2 黄酮抗肿瘤作用 | 第21页 |
| 1.3.3 黄酮抗肿瘤转移作用 | 第21-22页 |
| 1.4 本论文的主要研究内容与创新点 | 第22-24页 |
| 1.4.1 论文的主要研究内容 | 第22-23页 |
| 1.4.2 论文的创新点 | 第23-24页 |
| 第二章 九里香黄酮类化合物的提取、分离和分析 | 第24-37页 |
| 2.1 实验材料与仪器 | 第24-25页 |
| 2.1.1 试验原料与试剂 | 第24-25页 |
| 2.1.2 主要仪器 | 第25页 |
| 2.1.3 常用溶液的配制 | 第25页 |
| 2.2 实验方法 | 第25-27页 |
| 2.2.1 九里香黄酮类化合物的提取分离方法 | 第25-26页 |
| 2.2.2 化学鉴别 | 第26页 |
| 2.2.3 抗氧化清除DPPH自由基实验 | 第26-27页 |
| 2.2.4 高效液相色谱条件 | 第27页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第27-36页 |
| 2.3.1 化学鉴别判断分离物类型 | 第27-28页 |
| 2.3.2 分离物紫外-可见吸收光谱 | 第28页 |
| 2.3.3 分离物荧光光谱表征 | 第28-30页 |
| 2.3.4 DPPH自由基清除能力判断其抗氧化性 | 第30页 |
| 2.3.5 高效液相半制备色谱分离 | 第30-32页 |
| 2.3.6 六甲氧基二氢黄酮-鼠李糖基-鼠李糖苷的结构分析 | 第32-36页 |
| 2.4 小结 | 第36-37页 |
| 第三章 九里香黄酮类化合物的抗肿瘤转移作用研究 | 第37-51页 |
| 3.1 实验材料与仪器 | 第37-40页 |
| 3.1.1 主要药品与试剂 | 第37-38页 |
| 3.1.2 主要仪器与材料 | 第38-39页 |
| 3.1.3 常用溶液的配制 | 第39-40页 |
| 3.2 实验方法 | 第40-44页 |
| 3.2.1 细胞培养 | 第40页 |
| 3.2.2 MTT法检测目标药物对结肠癌细胞HT-29增殖抑制作用 | 第40-41页 |
| 3.2.3 MTT法检测目标药物对结肠癌细胞HT-29与基质成分Fn粘附的影响 | 第41页 |
| 3.2.4 荧光显微镜拍照法考察目标药物对结肠癌细胞HT-29与HUVECs粘附的影响 | 第41-42页 |
| 3.2.5 细胞划痕实验检测目标药物对结肠癌细胞HT-29迁移能力的影响 | 第42-43页 |
| 3.2.6 Transwell实验检测目标药物对结肠癌细胞HT-29侵袭能力的影响 | 第43页 |
| 3.2.7 体内抗肿瘤转移实验 | 第43-44页 |
| 3.2.8 统计学处理 | 第44页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第44-50页 |
| 3.3.1 MTT结果 | 第44-45页 |
| 3.3.2 目标药物对结肠癌细胞HT-29与基质成分Fn及其HUVECs粘附的影响 | 第45-46页 |
| 3.3.3 目标药物对结肠癌细胞HT-29迁移与侵袭能力的影响 | 第46-48页 |
| 3.3.4 动物模型检测目标药物对体内肿瘤转移的作用 | 第48-50页 |
| 3.4 小结 | 第50-51页 |
| 第四章 九里香黄酮类化合物的抗肿瘤转移作用机制探讨 | 第51-64页 |
| 4.1 实验材料与仪器 | 第51-53页 |
| 4.1.1 主要药品与试剂 | 第51-52页 |
| 4.1.2 主要仪器与材料 | 第52-53页 |
| 4.1.3 常用溶液的配制 | 第53页 |
| 4.2 实验方法 | 第53-56页 |
| 4.2.1 荧光倒置显微镜细胞形态学观察 | 第53-54页 |
| 4.2.2 流式细胞术检测细胞周期分布 | 第54页 |
| 4.2.3 流式细胞术检测Annexin V-FITC/PI细胞凋亡 | 第54页 |
| 4.2.4 流式细胞术检测结肠癌细胞HT-29表面整合素β1、α6和CD44的表达 | 第54-55页 |
| 4.2.5 流式细胞术检测HUVECs表面E-selectin、ICAM-1的表达 | 第55页 |
| 4.2.6 流式细胞术检测结肠癌细胞HT-29对目标药物的摄取 | 第55页 |
| 4.2.7 统计学处理 | 第55-56页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第56-62页 |
| 4.3.1 结肠癌细胞HT-29形态学观察 | 第56-57页 |
| 4.3.2 PI单染检测细胞周期分布结果 | 第57-58页 |
| 4.3.3 Annexin V-FTTC/PI的细胞凋亡检测 | 第58-59页 |
| 4.3.4 结肠癌细胞HT-29表面整合素β1、α6和CD44的表达 | 第59-60页 |
| 4.3.5 HUVECs表面E-selectin、ICAM-1的表达 | 第60-61页 |
| 4.3.6 目标药物被结肠癌细胞HT-29吸收的情况 | 第61-62页 |
| 4.4 小结 | 第62-64页 |
| 结论 | 第64-65页 |
| 展望 | 第65-66页 |
| 参考文献 | 第66-74页 |
| 致谢 | 第74-75页 |
| 个人简历 | 第75-76页 |
