| 摘要 | 第4-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 第一章 文献综述 | 第10-20页 |
| 1.1 食(药)用真菌研究概况 | 第10页 |
| 1.2 食(药)用真菌多糖的活性 | 第10-12页 |
| 1.2.1 真菌多糖的抗肿瘤活性 | 第10-11页 |
| 1.2.2 真菌多糖的免疫调节作用 | 第11页 |
| 1.2.3 真菌多糖的抗突变作用 | 第11页 |
| 1.2.4 真菌多糖的降血糖作用 | 第11页 |
| 1.2.5 真菌多糖的抗病毒作用 | 第11-12页 |
| 1.2.6 真菌多糖的抗氧化作用 | 第12页 |
| 1.3 食(药)用真菌多糖的分离纯化及活性研究 | 第12-13页 |
| 1.3.1 真菌多糖的提取 | 第12页 |
| 1.3.2 真菌多糖的分离纯化 | 第12-13页 |
| 1.3.3 真菌多糖的活性研究 | 第13页 |
| 1.4 食(药)用真菌多酚的介绍 | 第13-14页 |
| 1.5 灰树花 | 第14-17页 |
| 1.5.1 灰树花的介绍 | 第14页 |
| 1.5.2 灰树花液体深层发酵的研究进展 | 第14-15页 |
| 1.5.3 灰树花多酚类物质的研究现状 | 第15-16页 |
| 1.5.4 灰树花多糖类物质的研究现状 | 第16-17页 |
| 1.5.4.1 灰树花多糖类物质的提取 | 第16页 |
| 1.5.4.2 灰树花多糖类物质的分离纯化 | 第16-17页 |
| 1.5.4.3 灰树花多糖类物质的生理活性 | 第17页 |
| 1.5.4.4 灰树花多糖的发展前景 | 第17页 |
| 1.6 本课题的研究意义及内容 | 第17-20页 |
| 1.6.1 本课题的研究意义 | 第18页 |
| 1.6.2 本课题的研究内容 | 第18-20页 |
| 第二章 材料与方法 | 第20-33页 |
| 2.1 实验材料 | 第20-23页 |
| 2.1.1 菌种 | 第20页 |
| 2.1.2 实验中用到的培养基 | 第20-21页 |
| 2.1.3 主要实验仪器 | 第21-22页 |
| 2.1.4 主要实验试剂和药品 | 第22-23页 |
| 2.2 实验方法 | 第23-33页 |
| 2.2.1 灰树花菌丝体液体深层发酵培养基的优化 | 第23-25页 |
| 2.2.1.1 灰树花菌丝体的培养方法 | 第23页 |
| 2.2.1.2 灰树花菌丝体生物量的测定方法 | 第23页 |
| 2.2.1.3 单因素实验法 | 第23-24页 |
| 2.2.1.4 中心复合响应面优化设计法 | 第24-25页 |
| 2.2.2 灰树花菌丝体多酚类物质的分离提取及活性研究 | 第25-28页 |
| 2.2.2.1 实验设计路线 | 第25-26页 |
| 2.2.2.2 灰树花多酚的提取及含量测定 | 第26页 |
| 2.2.2.3 灰树花多酚的分离纯化 | 第26-27页 |
| 2.2.2.4 灰树花多酚抑菌活性的研究 | 第27-28页 |
| 2.2.3 灰树花菌丝体多糖类物质的分离提取及活性研究 | 第28-33页 |
| 2.2.3.1 灰树花菌丝体多糖提取方法的设计 | 第28-30页 |
| 2.2.3.2 灰树花菌丝体多糖的分离纯化 | 第30-32页 |
| 2.2.3.3 灰树花菌丝体多糖抑菌活性研究 | 第32-33页 |
| 第三章 结果与讨论 | 第33-58页 |
| 3.1 灰树花菌丝体液体发酵培养基的优化 | 第33-41页 |
| 3.1.1 不同因素对灰树花菌丝体生物量的影响 | 第33-37页 |
| 3.1.1.1 不同碳源对灰树花生物量的影响 | 第33页 |
| 3.1.1.2 不同氮源对灰树花生物量的影响 | 第33-34页 |
| 3.1.1.3 不同维生素对灰树花生物量的影响 | 第34-35页 |
| 3.1.1.4 葡萄糖加入量对灰树花生物量的影响 | 第35页 |
| 3.1.1.5 麸皮加入量对灰树花生物量的影响 | 第35-36页 |
| 3.1.1.6 VB_6加入量对灰树花生物量的影响 | 第36-37页 |
| 3.1.2 灰树花菌丝体生长曲线 | 第37页 |
| 3.1.3 响应面对培养基的优化实验 | 第37-41页 |
| 3.2 灰树花菌丝体多酚类物质分离提取及活性研究 | 第41-46页 |
| 3.2.1 多酚标准曲线的绘制 | 第41-42页 |
| 3.2.2 AB-8大孔树脂静态吸附曲线 | 第42页 |
| 3.2.3 解吸剂浓度对解析率的影响曲线 | 第42-43页 |
| 3.2.4 AB-8大孔树脂动态洗脱曲线 | 第43-44页 |
| 3.2.5 灰树花多酚的抑菌结果 | 第44页 |
| 3.2.6 灰树花多酚最低抑菌浓度(MIC)的测定 | 第44-45页 |
| 3.2.7 灰树花多酚热稳定性的测定 | 第45-46页 |
| 3.2.8 pH对灰树花多酚的抑菌影响 | 第46页 |
| 3.3 灰树花碱溶性多糖的提取纯化及活性研究 | 第46-58页 |
| 3.3.1 灰树花碱溶性多糖提取单因素实验 | 第46-48页 |
| 3.3.1.1 不同料液比对灰树花碱溶性多糖提取的影响 | 第46-47页 |
| 3.3.1.2 不同时间对灰树花碱溶性多糖提取的影响 | 第47页 |
| 3.3.1.3 不同NaOH浓度对灰树花碱溶性多糖提取的影响 | 第47-48页 |
| 3.3.2 响应面法优化灰树花碱溶性多糖的提取条件 | 第48-53页 |
| 3.3.2.1 苯酚-硫酸法标准曲线的绘制 | 第48-49页 |
| 3.3.2.2 响应面实验设计方案与结果 | 第49-53页 |
| 3.3.3 灰树花碱溶性多糖的分离纯化 | 第53-56页 |
| 3.3.3.1 考马斯亮蓝G-250法测定蛋白质标准曲线 | 第53-54页 |
| 3.3.3.2 DEAE-52阴离子交换柱洗脱曲线 | 第54-55页 |
| 3.3.3.3 Sephadex G-200凝胶柱洗脱曲线 | 第55-56页 |
| 3.3.4 灰树花碱溶性多糖Ⅱ-1组分的抑菌活性 | 第56-58页 |
| 第四章 结论 | 第58-59页 |
| 参考文献 | 第59-63页 |
| 致谢 | 第63页 |
