摘要 | 第5-7页 |
Abstract | 第7-9页 |
中英文对照缩略词表 | 第13-15页 |
第一章 引言 | 第15-23页 |
1.1 PD的概述 | 第15-17页 |
1.1.1 PD的背景简述 | 第15-16页 |
1.1.2 PD的神经免疫炎性机制 | 第16-17页 |
1.1.3 MPTP小鼠模型与PD神经免疫炎性机制的研究 | 第17页 |
1.2 Th17的概述 | 第17-18页 |
1.2.1 Th17的来源与分化 | 第17-18页 |
1.2.2 Th17与PD神经免疫炎性机制间的联系 | 第18页 |
1.3 MDSC的概述 | 第18-19页 |
1.3.1 MDSC及其表面标记物 | 第18-19页 |
1.3.2 吉西他滨可选择性消除MDSC | 第19页 |
1.4 Th17和MDSC在免疫炎性疾病中的联系 | 第19-20页 |
1.5 本课题研究思路 | 第20-23页 |
1.5.1 研究目的 | 第20页 |
1.5.2 研究方法 | 第20-21页 |
1.5.3 实验方案 | 第21-22页 |
1.5.4 研究意义 | 第22-23页 |
第二章 初诊PD患者外周血Th17与MDSC检测及相关性分析 | 第23-32页 |
2.1 研究对象 | 第23-24页 |
2.1.1 PD组患者 | 第23-24页 |
2.1.2 对照组人员 | 第24页 |
2.2 实验相关仪器和试剂 | 第24-25页 |
2.2.1 主要实验仪器和耗材 | 第24页 |
2.2.2 主要试剂和抗体 | 第24-25页 |
2.2.3 主要溶液配制 | 第25页 |
2.3 实验方法 | 第25-27页 |
2.3.1 外周血标本采集 | 第25页 |
2.3.2 外周血PBMC分离 | 第25-26页 |
2.3.3 流式细胞仪检测各组外周血MDSC细胞百分率 | 第26页 |
2.3.4 流式细胞仪检测各组外周血Th17细胞百分率 | 第26页 |
2.3.5 统计学分析 | 第26-27页 |
2.4 实验结果 | 第27-30页 |
2.4.1 PD组和对照组的一般情况 | 第27-28页 |
2.4.2 流式细胞仪检测PD组和对照组外周血中Th17细胞百分率 | 第28-29页 |
2.4.3 流式细胞仪检测PD组和对照组外周血中MDSC细胞百分率 | 第29页 |
2.4.4 PD组与对照组外周血Th17和MDSC细胞百分率相关性 | 第29-30页 |
2.5 讨论 | 第30-32页 |
第三章 Th17和MDSC参与PD免疫炎性反应机制的研究 | 第32-45页 |
3.1 实验动物 | 第32页 |
3.2 实验相关仪器和试剂 | 第32-34页 |
3.2.1 主要仪器和耗材 | 第32-33页 |
3.2.2 主要试剂和抗体 | 第33-34页 |
3.2.3 主要溶液配制 | 第34页 |
3.3 实验方法 | 第34-38页 |
3.3.1 动物分组 | 第34页 |
3.3.2 动物给药方法及处理 | 第34页 |
3.3.3 行为学实验:小鼠爬杆实验 | 第34-35页 |
3.3.4 行为学实验:小鼠悬挂实验 | 第35页 |
3.3.5 行为学实验:小鼠强迫游泳实验 | 第35页 |
3.3.6 免疫组化检测小鼠中脑黑质区的TH阳性细胞 | 第35-36页 |
3.3.7 小鼠脾脏悬液制作 | 第36页 |
3.3.8 流式细胞仪检测脾脏悬液Th17细胞百分率 | 第36页 |
3.3.9 流式细胞仪检测脾脏悬液MDSC细胞百分率 | 第36-37页 |
3.3.10 统计学分析 | 第37-38页 |
3.4 实验结果 | 第38-42页 |
3.4.1 小鼠一般运动情况观察 | 第38页 |
3.4.2 各组小鼠行为学实验中各段时间比较 | 第38-39页 |
3.4.3 各组小鼠中脑黑质区TH阳性细胞免疫组化染色 | 第39-40页 |
3.4.4 流式细胞仪检测各组小鼠脾脏悬液中Th17细胞百分率 | 第40-41页 |
3.4.5 流式细胞仪检测各组小鼠脾脏悬液中MDSC细胞百分率 | 第41-42页 |
3.4.6 PD组和PD+吉西他滨组小鼠脾脏悬液中Th17与MDSC的相关性 | 第42页 |
3.5 讨论 | 第42-45页 |
第四章 结论与展望 | 第45-46页 |
4.1 结论 | 第45页 |
4.2 展望 | 第45-46页 |
参考文献 | 第46-54页 |
综述 | 第54-65页 |
综述参考文献 | 第59-65页 |
致谢 | 第65-67页 |
在学校期间发表的学术论文及其他科研成果 | 第67页 |