| 摘要 | 第5-7页 |
| ABSTRACT | 第7-8页 |
| 第1章 绪论 | 第12-29页 |
| 1.1 厌氧氨氧化技术及其组合工艺 | 第12-17页 |
| 1.1.1 氨氮排放现状及危害 | 第12-13页 |
| 1.1.2 传统脱氮工艺面临的挑战 | 第13-15页 |
| 1.1.3 基于厌氧氨氧化技术的组合工艺及其应用现状 | 第15-17页 |
| 1.2 厌氧氨氧化及其组合工艺中关键菌群的微生物学特性 | 第17-23页 |
| 1.2.1 氨氧化菌(AOB) | 第17-18页 |
| 1.2.2 亚硝酸盐氧化菌(NOB) | 第18-19页 |
| 1.2.3 厌氧氨氧化菌(Anammox bacteria) | 第19-23页 |
| 1.3 厌氧氨氧化菌群优化策略 | 第23-26页 |
| 1.3.1 物理法 | 第23-25页 |
| 1.3.2 化学法 | 第25-26页 |
| 1.4 研究的目的、意义及内容 | 第26-29页 |
| 1.4.1 研究的目的和意义 | 第26-27页 |
| 1.4.2 主要研究内容 | 第27-28页 |
| 1.4.3 技术路线 | 第28页 |
| 1.4.4 项目来源 | 第28-29页 |
| 第2章 材料与方法 | 第29-41页 |
| 2.1 试验材料 | 第29-35页 |
| 2.1.1 试验装置 | 第29-30页 |
| 2.1.2 模拟废水 | 第30-31页 |
| 2.1.3 物质投加策略 | 第31-32页 |
| 2.1.4 接种泥 | 第32-33页 |
| 2.1.5 培养基及缓冲液 | 第33-34页 |
| 2.1.6 引物 | 第34页 |
| 2.1.7 试剂盒 | 第34-35页 |
| 2.1.8 仪器 | 第35页 |
| 2.2 试验方法 | 第35-41页 |
| 2.2.1 传统微生物培养法 | 第35-36页 |
| 2.2.2 菌落PCR | 第36页 |
| 2.2.3 DNA提取 | 第36页 |
| 2.2.4 基于16S rRNA高通量测序 | 第36-38页 |
| 2.2.5 基于16S rRNA的功能分析 | 第38页 |
| 2.2.6 扫描电镜 | 第38页 |
| 2.2.7 厌氧氨氧化菌活性测定 | 第38-39页 |
| 2.2.8 AOB、NOB活性测定 | 第39-40页 |
| 2.2.9 水质参数分析方法 | 第40页 |
| 2.2.10 数据分析 | 第40-41页 |
| 第3章 厌氧氨氧化反应器中微生物的表征研究 | 第41-53页 |
| 3.1 概述 | 第41页 |
| 3.2 结果与讨论 | 第41-51页 |
| 3.2.1 启动过程脱氮效果与微生物形态 | 第41-44页 |
| 3.2.2 异养菌特征 | 第44-46页 |
| 3.2.3 微生物群落演替 | 第46-51页 |
| 3.3 小结 | 第51-53页 |
| 第4章 Fe~(2+)、氧化石墨烯和Fe~(3+)强化厌氧氨氧化菌群的比较研究 | 第53-62页 |
| 4.1 概述 | 第53页 |
| 4.2 数据处理 | 第53-54页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第54-60页 |
| 4.3.1 运行效果 | 第54-56页 |
| 4.3.2 厌氧氨氧化菌活性变化 | 第56-57页 |
| 4.3.3 污泥形态变化 | 第57-58页 |
| 4.3.4 微生物群落的演替 | 第58-59页 |
| 4.3.5 功能丰度变化 | 第59-60页 |
| 4.4 小结 | 第60-62页 |
| 第5章 Fe~(2+)和羟胺对一体式部分亚硝化-厌氧氨氧化工艺中关键菌群的优化 | 第62-72页 |
| 5.1 概述 | 第62-63页 |
| 5.2 数据处理 | 第63页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第63-71页 |
| 5.3.1 运行效果 | 第64-69页 |
| 5.3.2 关键菌群活性变化 | 第69-70页 |
| 5.3.3 污泥形态变化 | 第70-71页 |
| 5.4 小结 | 第71-72页 |
| 第6章 结论与展望 | 第72-74页 |
| 6.1 结论 | 第72-73页 |
| 6.2 展望 | 第73-74页 |
| 参考文献 | 第74-84页 |
| 附录A 图目录 | 第84-85页 |
| 附录B 表目录 | 第85-86页 |
| 致谢 | 第86-88页 |
| 在读期间发表的学术论文及学术成果 | 第88页 |
