| 摘要 | 第5-6页 |
| ABSTRACT | 第6-7页 |
| 第1章 绪论 | 第10-21页 |
| 1.1 硫丹的研究背景 | 第10-15页 |
| 1.1.1 硫丹的结构和理化性质 | 第10-11页 |
| 1.1.2 硫丹的毒理学特点 | 第11页 |
| 1.1.3 硫丹对人类健康的危害 | 第11-13页 |
| 1.1.4 硫丹的细胞毒性研究现状 | 第13-15页 |
| 1.2 血管内皮细胞的研究意义 | 第15-17页 |
| 1.2.1 血管内皮细胞的特点 | 第15-16页 |
| 1.2.2 血管内皮损伤与功能失调 | 第16-17页 |
| 1.2.3 血管内皮损伤与人类疾病关联 | 第17页 |
| 1.3 miRNA的研究进展 | 第17-20页 |
| 1.3.1 miRNA简介 | 第17-18页 |
| 1.3.2 miRNA在心血管疾病中的作用 | 第18-19页 |
| 1.3.3 miR-22的研究进展 | 第19-20页 |
| 1.4 本研究的目的及意义 | 第20-21页 |
| 第2章 材料与方法 | 第21-39页 |
| 2.1 实验材料 | 第21页 |
| 2.2 实验设备及试剂 | 第21-25页 |
| 2.2.1 实验设备 | 第21-22页 |
| 2.2.2 实验耗材及试剂 | 第22-25页 |
| 2.3 实验方法 | 第25-39页 |
| 2.3.1 细胞培养 | 第25页 |
| 2.3.2 细胞复苏 | 第25-26页 |
| 2.3.3 细胞冻存 | 第26页 |
| 2.3.4 细胞传代 | 第26-27页 |
| 2.3.5 细胞同步化处理 | 第27页 |
| 2.3.6 硫丹暴露处理 | 第27页 |
| 2.3.7 细胞毒性测定 | 第27-28页 |
| 2.3.8 细胞增殖测定 | 第28页 |
| 2.3.9 细胞周期检测 | 第28-29页 |
| 2.3.10 蛋白质免疫印迹实验 | 第29-31页 |
| 2.3.11 细胞凋亡检测 | 第31-32页 |
| 2.3.12 分光光度法检测caspase-3相对活化程度 | 第32页 |
| 2.3.13 线粒体膜电位检测 | 第32-33页 |
| 2.3.14 转染实验 | 第33-34页 |
| 2.3.15 miRNA的实时荧光定量PCR检测 | 第34-36页 |
| 2.3.16 mRNA的实时荧光定量PCR检测 | 第36-38页 |
| 2.3.17 酶联免疫吸附实验 | 第38页 |
| 2.3.18 统计学分析方法 | 第38-39页 |
| 第3章 结果与讨论 | 第39-59页 |
| 3.1 硫丹暴露对HUVEC-C细胞功能的影响 | 第39-52页 |
| 3.1.1 硫丹暴露对HUVEC-C细胞毒性的影响 | 第39-40页 |
| 3.1.2 硫丹暴露对HUVEC-C细胞周期的影响及其分子机制研究 | 第40-44页 |
| 3.1.3 硫丹暴露对HUVEC-C细胞凋亡的影响及其分子机制研究 | 第44-49页 |
| 3.1.4 硫丹暴露对HUVEC-C细胞炎症因子IL-6和IL-8分泌及表达的影响 | 第49-52页 |
| 3.2 miR-22表达变化及功能研究 | 第52-59页 |
| 3.2.1 硫丹暴露对miR-22表达的时间效应和剂量效应影响 | 第52-54页 |
| 3.2.2 miR-22在血管内皮细胞中的功能研究 | 第54-59页 |
| 结论 | 第59-60页 |
| 参考文献 | 第60-69页 |
| 攻读学位期间公开发表论文 | 第69-70页 |
| 致谢 | 第70-71页 |
| 作者简介 | 第71页 |
