| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 目录 | 第10-14页 |
| 缩略语表 | 第14-15页 |
| 第1章 文献综述 | 第15-36页 |
| 1.1 PAHs和砷 | 第15-16页 |
| 1.2 PAHs污染 | 第16-18页 |
| 1.2.1 高盐环境下PAHs污染 | 第17页 |
| 1.2.2 PAHs和砷复合污染 | 第17-18页 |
| 1.3 修复策略 | 第18-20页 |
| 1.4 PAHs的生物降解 | 第20-29页 |
| 1.4.1 PAHs降解菌及其代谢方式 | 第20-21页 |
| 1.4.2 嗜盐PAHs降解菌 | 第21-23页 |
| 1.4.3 耐砷PAHs降解菌 | 第23页 |
| 1.4.4 微生物代谢PAHs的途径 | 第23-28页 |
| 1.4.4.1 菲代谢途径 | 第23-25页 |
| 1.4.4.2 重要菲中间体代谢途径 | 第25-26页 |
| 1.4.4.3 蒽代谢途径 | 第26页 |
| 1.4.4.4 芘代谢途径 | 第26-28页 |
| 1.4.4.5 苯并[a]芘代谢途径 | 第28页 |
| 1.4.5 PAHs降解酶基因 | 第28-29页 |
| 1.5 砷的微生物转化与超富集 | 第29-34页 |
| 1.5.1 微生物的砷代谢机制 | 第29-31页 |
| 1.5.2 砷超富集植物：蜈蚣草 | 第31-34页 |
| 1.6 课题研究目的、内容与技术路线 | 第34-36页 |
| 第2章 耐盐菌株降解PAHs的特性及途径研究 | 第36-59页 |
| 2.1 引言 | 第36页 |
| 2.2 实验材料与方法 | 第36-42页 |
| 2.2.1 材料 | 第36-39页 |
| 2.2.1.1 供试菌株 | 第36-37页 |
| 2.2.1.2 培养基与试剂 | 第37-38页 |
| 2.2.1.3 实验仪器 | 第38-39页 |
| 2.2.1.4 供试鼠李糖脂 | 第39页 |
| 2.2.2 方法 | 第39-42页 |
| 2.2.2.1 AD-3菌株对PAHs的降解 | 第39-40页 |
| 2.2.2.2 AD-3菌株对PAHs代谢中间产物的利用 | 第40页 |
| 2.2.2.3 PAHs的分析 | 第40页 |
| 2.2.2.4 PAHs降解产物的分析 | 第40-41页 |
| 2.2.2.5 PAHs代谢过程酶活分析 | 第41-42页 |
| 2.2.2.6 PAHs降解过程中毒性评价 | 第42页 |
| 2.2.2.7 数据统计分析 | 第42页 |
| 2.3 实验结果与讨论 | 第42-57页 |
| 2.3.1 AD-3菌株降解蒽的特性 | 第42-45页 |
| 2.3.2 AD-3菌株降解菲的特性 | 第45-49页 |
| 2.3.2.1 AD-3菲降解条件的优化 | 第45-47页 |
| 2.3.2.2 优化条件下菲的生长和降解曲线 | 第47-48页 |
| 2.3.2.3 AD-3降解菲过程中的毒性评价 | 第48-49页 |
| 2.3.2.4 金属离子对AD-3降解菲的影响 | 第49页 |
| 2.3.3 AD-3菌株菲代谢途径的推测 | 第49-53页 |
| 2.3.3.1 菲代谢产物的鉴定 | 第50页 |
| 2.3.3.2 相关酶活性评价 | 第50-51页 |
| 2.3.3.3 AD-3菌株对降解中间产物的利用情况 | 第51-53页 |
| 2.3.4 AD-3菌株降解HMW PAHs(芘和苯并[a]芘)的特性 | 第53-57页 |
| 2.4 本章小结 | 第57-59页 |
| 第3章 同时还原砷和降解多环芳烃菌株的筛选与鉴定 | 第59-64页 |
| 3.1 引言 | 第59页 |
| 3.2 实验材料与方法 | 第59-62页 |
| 3.2.1 材料 | 第59-60页 |
| 3.2.1.1 主要试剂 | 第59-60页 |
| 3.2.1.2 实验仪器 | 第60页 |
| 3.2.1.3 主要培养基 | 第60页 |
| 3.2.2 方法 | 第60-62页 |
| 3.2.2.1 土壤样品的采集与处理 | 第60-61页 |
| 3.2.2.2 菌株筛选 | 第61页 |
| 3.2.2.3 菌株基因组DNA提取 | 第61页 |
| 3.2.2.4 16S rRNA基因PCR扩增 | 第61页 |
| 3.2.2.5 测序与系统发育树构建 | 第61-62页 |
| 3.3 实验结果与讨论 | 第62-63页 |
| 3.3.1 PAHAs-1菌株的分离 | 第62页 |
| 3.3.2 PAHAs-1菌株16S rRNA基因鉴定和系统发育树分析 | 第62-63页 |
| 3.4 本章小结 | 第63-64页 |
| 第4章 PAHAs-1菌株同时降解PAHs与还原As(Ⅴ)的特性 | 第64-80页 |
| 4.1 引言 | 第64页 |
| 4.2 实验材料与方法 | 第64-69页 |
| 4.2.1 材料 | 第64-65页 |
| 4.2.1.1 试剂与培养基 | 第64-65页 |
| 4.2.1.2 实验仪器 | 第65页 |
| 4.2.1.3 供试菌株 | 第65页 |
| 4.2.2 方法 | 第65-69页 |
| 4.2.2.1 PAHAs-1菌株对As(Ⅲ)和As(Ⅴ)的耐受性研究 | 第65-66页 |
| 4.2.2.2 PAHAs-1菌株对As(Ⅴ)的还原实验 | 第66页 |
| 4.2.2.3 PAHAs-1菌株对PAHs的降解 | 第66页 |
| 4.2.2.4 PAHs的分析 | 第66页 |
| 4.2.2.5 总砷和砷形态分析 | 第66-67页 |
| 4.2.2.6 功能基因的PCR扩增 | 第67-68页 |
| 4.2.2.7 测序与系统发育树构建 | 第68页 |
| 4.2.2.8 数据分析 | 第68-69页 |
| 4.3 实验结果与讨论 | 第69-79页 |
| 4.3.1 PAHAs-1菌株砷耐受特性 | 第69页 |
| 4.3.2 HG-AFS定量检测As(Ⅴ)和As(Ⅲ)方法的建立 | 第69页 |
| 4.3.3 PAHAs-1菌株还原砷的特性 | 第69-73页 |
| 4.3.4 PAHAs-1菌株降解PAHs的特性 | 第73-75页 |
| 4.3.5 乳酸钠强化PAHAs-1菌株降解PAHs和还原砷 | 第75页 |
| 4.3.6 PAHs环羟基化双加氧酶α大亚基基因的PCR扩增 | 第75-76页 |
| 4.3.7 砷转运蛋白基因和砷还原酶基因的PCR扩增 | 第76-79页 |
| 4.4 本章小结 | 第79-80页 |
| 第5章 PAHAs-1菌株和蜈蚣草联合修复菲-砷复合污染的研究 | 第80-98页 |
| 5.1 引言 | 第80页 |
| 5.2 实验材料与方法 | 第80-85页 |
| 5.2.1 材料 | 第80-82页 |
| 5.2.1.1 试剂与培养液 | 第80-81页 |
| 5.2.1.2 实验仪器 | 第81-82页 |
| 5.2.1.3 供试PAHAs-1菌株 | 第82页 |
| 5.2.1.4 供试植物 | 第82页 |
| 5.2.2 实验方法 | 第82-85页 |
| 5.2.2.1 水培试验设计 | 第82-83页 |
| 5.2.2.2 样品采集与预处理 | 第83页 |
| 5.2.2.3 蜈蚣草干重测定 | 第83页 |
| 5.2.2.4 菲的分析 | 第83-84页 |
| 5.2.2.5 总砷和As形态分析 | 第84页 |
| 5.2.2.6 抗氧化酶分析 | 第84-85页 |
| 5.2.2.7 数据分析 | 第85页 |
| 5.3 实验结果与讨论 | 第85-97页 |
| 5.3.1 接种PAHAs-1对蜈蚣草生物量的影响 | 第85-87页 |
| 5.3.2 PAHAs-1菌株对水培液中砷转化的贡献 | 第87-91页 |
| 5.3.3 接种PAHAs-1对蜈蚣草中砷的累积和形态变化的影响 | 第91-92页 |
| 5.3.4 接种PAHAs-1对水培液中菲的去除及蜈蚣草吸收菲的影响 | 第92-95页 |
| 5.3.5 接种PAHAs-1对蜈蚣草组织中抗氧化指标的影响 | 第95-97页 |
| 5.4 本章小结 | 第97-98页 |
| 第6章 结论与展望 | 第98-101页 |
| 6.1 主要结论 | 第98-99页 |
| 6.2 论文创新点 | 第99页 |
| 6.3 展望 | 第99-101页 |
| 参考文献 | 第101-121页 |
| 攻读博士学位期间研究成果 | 第121-123页 |
| 致谢 | 第123页 |
