| 中文摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-8页 |
| 缩略语/符号说明 | 第11-12页 |
| 前言 | 第12-19页 |
| 研究现状、成果 | 第12-16页 |
| 研究目的、方法 | 第16-19页 |
| 一、坐骨神经预损伤组和单纯脊髓后索损伤组大鼠背根神经节组织的miRNA表达谱分析 | 第19-29页 |
| 1.1 对象和方法 | 第19-25页 |
| 1.1.1 实验动物分组 | 第19页 |
| 1.1.2 实验设备 | 第19-20页 |
| 1.1.3 实验器械 | 第20页 |
| 1.1.4 实验试剂 | 第20-21页 |
| 1.1.5 实验方法 | 第21-25页 |
| 1.2 结果 | 第25-26页 |
| 1.2.1 模型制作操作后大鼠观察情况 | 第25页 |
| 1.2.2 SNCI组和SDCL组大鼠DRG组织miRNA表达情况分析 | 第25-26页 |
| 1.2.3 SNCI组和SDCL组大鼠DRG组织miR175p的表达模式 | 第26页 |
| 1.2.4 影响miR175p表达下调的因素 | 第26页 |
| 1.3 讨论 | 第26-28页 |
| 1.3.1 Microarray芯片研究SNCI促进DCL修复的优势 | 第27页 |
| 1.3.2 miR175p在SNCI修复DCL过程中具有重要生物学意义 | 第27-28页 |
| 1.4 小结 | 第28-29页 |
| 二、miR175p对DRG神经元轴突再生修复的影响 | 第29-43页 |
| 2.1 对象和方法 | 第29-37页 |
| 2.1.1 实验动物分组 | 第29页 |
| 2.1.2 实验设备 | 第29-30页 |
| 2.1.3 实验器械 | 第30页 |
| 2.1.4 实验试剂 | 第30-32页 |
| 2.1.5 实验方法 | 第32-37页 |
| 2.2 结果 | 第37-38页 |
| 2.2.1 抑制miR175p对DRG神经元的影响 | 第37页 |
| 2.2.2 miR175p靶基因的预测及验证 | 第37-38页 |
| 2.2.3 STAT3蛋白在DRG神经元轴突再生修复中的作用 | 第38页 |
| 2.3 讨论 | 第38-41页 |
| 2.3.1 miR175p可能和轴突再生以及GAP-43蛋白表达有关 | 第38-39页 |
| 2.3.2 SNCI可通过miR175p引起STAT3蛋白表达发生改变 | 第39-41页 |
| 2.3.3 miR175p通过调控STAT3蛋白表达最终影响轴突再生修复 | 第41页 |
| 2.4 小结 | 第41-43页 |
| 三、PEITC对DRG神经元轴突再生修复的作用 | 第43-51页 |
| 3.1 对象和方法 | 第43-49页 |
| 3.1.1 实验设备 | 第43页 |
| 3.1.2 实验器械 | 第43页 |
| 3.1.3 实验试剂 | 第43-45页 |
| 3.1.4 实验方法 | 第45-49页 |
| 3.2 结果 | 第49-50页 |
| 3.2.1 PEITC对DRG神经元轴突再生修复的作用 | 第49-50页 |
| 3.3 讨论 | 第50页 |
| 3.3.1 PEITC促进DRG神经元轴突损伤后的再生修复 | 第50页 |
| 3.4 小结 | 第50-51页 |
| 结论 | 第51-52页 |
| 参考文献 | 第52-63页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第63-65页 |
| 附录 | 第65-80页 |
| 综述 胸椎管狭窄症手术并发症防治的研究进展 | 第80-91页 |
| 综述参考文献 | 第85-91页 |
| 致谢 | 第91-92页 |
| 个人简历 | 第92页 |
