摘要 | 第4-6页 |
Abstract | 第6-8页 |
第一章 绪论 | 第16-64页 |
1.1 引言 | 第16-18页 |
1.2 荧光传感器的简介 | 第18-29页 |
1.2.1 荧光的原理 | 第18页 |
1.2.2 有机荧光传感器的构成 | 第18-21页 |
1.2.2.1 荧光团 | 第18-20页 |
1.2.2.2 识别基团 | 第20-21页 |
1.2.3 荧光传感器的分类 | 第21-29页 |
1.2.3.1 光诱导电子转移 | 第21-22页 |
1.2.3.2 分子内电荷转移 | 第22-24页 |
1.2.3.3 激发态分子内质子转移 | 第24-26页 |
1.2.3.4 荧光共振能量转移 | 第26-27页 |
1.2.3.5 聚集诱导发光 | 第27-29页 |
1.3 次氯酸探针的简介 | 第29-37页 |
1.3.1 次氯酸传感机理介绍 | 第29-36页 |
1.3.1.1 胺肟基团的氧化 | 第29-30页 |
1.3.1.2 酚羟基的氧化 | 第30-31页 |
1.3.1.3 硫醚的氧化 | 第31-32页 |
1.3.1.4 有机硒或碲化合物的氧化 | 第32-34页 |
1.3.1.5 其他传感机理 | 第34-36页 |
1.3.2 小结 | 第36-37页 |
1.4 生物硫醇探针的发展 | 第37-48页 |
1.4.1 生物硫醇探针的简介 | 第37页 |
1.4.2 化学反应型生物硫醇传感器 | 第37-47页 |
1.4.2.1 不能区分三种生物硫醇探针的传感机理 | 第37-40页 |
1.4.2.1.1 迈克尔加成机理 | 第38-39页 |
1.4.2.1.2 磺酰胺或磺酸酯的分解机理 | 第39页 |
1.4.2.1.3 S?S键或是Se?N键断裂的机理 | 第39-40页 |
1.4.2.2 能够区分三种生物硫醇的传感机理 | 第40-47页 |
1.4.2.2.1 基于芳香醛基或 α,β 不饱和醛基的荧光探针 | 第40-42页 |
1.4.2.2.2 基于丙烯酸酯基团的荧光探针 | 第42-43页 |
1.4.2.2.3 自然化学连接机理 | 第43-45页 |
1.4.2.2.4 基于芳香环取代重排反应机理的探针 | 第45-46页 |
1.4.2.2.5 其他传感机理 | 第46-47页 |
1.4.3 小结 | 第47-48页 |
1.5 水合肼探针的研究进展 | 第48-53页 |
1.5.1 反应型水合肼探针介绍 | 第48-53页 |
1.5.1.1 基于乙酰基团的荧光探针 | 第48-49页 |
1.5.1.2 基于 4-溴丁酸酯的荧光探针 | 第49-50页 |
1.5.1.3 基于邻苯二甲酰亚胺基的荧光探针 | 第50-51页 |
1.5.1.4 基于丙二腈基团的荧光探针 | 第51-52页 |
1.5.1.5 其他识别机理 | 第52-53页 |
1.5.2 小结 | 第53页 |
1.6 本论文的立题思想 | 第53-55页 |
参考文献 | 第55-64页 |
第二章 基于菲并咪唑的次氯酸探针的合成及其性能研究 | 第64-87页 |
2.1 引言 | 第64-65页 |
2.2 实验部分 | 第65-69页 |
2.2.1 原料和试剂 | 第65-66页 |
2.2.2 测试仪器 | 第66-67页 |
2.2.3 测试溶液的配制 | 第67页 |
2.2.4 探针PIPH的制备 | 第67-69页 |
2.2.4.1 合成路线和传感机理 | 第67页 |
2.2.4.2 PIBA的合成 | 第67-68页 |
2.2.4.3 PIPH的合成 | 第68页 |
2.2.4.4 PIPH与次氯酸钠反应 | 第68-69页 |
2.3 结果与讨论 | 第69-80页 |
2.3.1 裸眼识别 | 第69-70页 |
2.3.2 次氯酸对PIPH紫外吸收光谱的影响 | 第70页 |
2.3.3 探针PIPH的荧光滴定实验 | 第70-72页 |
2.3.4 荧光传感器PIPH选择性与竞争性实验 | 第72-74页 |
2.3.5 荧光探针的响应时间与pH值的影响 | 第74-75页 |
2.3.6 PIPH传感机理的探究及理论计算 | 第75-79页 |
2.3.7 探针PIPH的细胞成像实验 | 第79-80页 |
2.4 本章小结 | 第80-82页 |
参考文献 | 第82-87页 |
第三章 基于萘酰亚胺的生物硫醇探针的合成及性能研究 | 第87-110页 |
3.1 引言 | 第87-88页 |
3.2 实验部分 | 第88-92页 |
3.2.0 合成时所用的试剂及原料 | 第88-89页 |
3.2.1 后续测试时所用的试剂及原料 | 第89页 |
3.2.2 测试仪器 | 第89-90页 |
3.2.3 探针的合成 | 第90-92页 |
3.2.3.1 化合物DNBS的合成路线图以及识别机理 | 第90页 |
3.2.3.2 DNBS的合成 | 第90-92页 |
3.2.3.2.1 化合物1的合成 | 第90-91页 |
3.2.3.2.2 化合物2的合成 | 第91页 |
3.2.3.2.3 NIOH的合成 | 第91页 |
3.2.3.2.4 探针DNBS的合成 | 第91-92页 |
3.3 结果与讨论 | 第92-104页 |
3.3.1 探针DNBS对生物硫醇的裸眼识别 | 第92-93页 |
3.3.2 生物硫醇对探针DNBS的紫外吸收光谱的影响 | 第93-95页 |
3.3.3 生物硫醇对DNBS的荧光滴定实验 | 第95-98页 |
3.3.4 探针DNBS的选择性和竞争性实验 | 第98-101页 |
3.3.5 探针DNBS的响应时间与溶液pH值的影响 | 第101-102页 |
3.3.6 识别机理的探究 | 第102页 |
3.3.7 探针DNBS的细胞成像实验 | 第102-104页 |
3.4 本章小结 | 第104-105页 |
参考文献 | 第105-110页 |
第四章 基于 1,4-二羟基蒽醌的半胱氨酸探针的合成及其性质研究 | 第110-131页 |
4.1 引言 | 第110-111页 |
4.2 实验部分 | 第111-115页 |
4.2.1 合成时所用的试剂及原料 | 第111-112页 |
4.2.2 后续测试时所用的试剂及原料 | 第112页 |
4.2.3 测试仪器 | 第112-113页 |
4.2.4 探针的合成 | 第113-114页 |
4.2.4.1 合成路线图以及识别机理图 | 第113页 |
4.2.4.2 AQDA的合成 | 第113-114页 |
4.2.5 紫外吸收与荧光光谱测试母液的配置 | 第114页 |
4.2.6 理论计算参数的设定 | 第114页 |
4.2.7 细胞培养与细胞成像 | 第114-115页 |
4.3 结果与讨论 | 第115-125页 |
4.3.1 AQDA对各种氨基酸的裸眼识别 | 第115页 |
4.3.2 Cys对AQDA紫外—可见光谱的影响 | 第115-116页 |
4.3.3 Cys对AQDA的荧光滴定实验 | 第116-117页 |
4.3.4 AQDA的选择性与竞争性实验 | 第117-118页 |
4.3.5 AQDA对Cys的响应时间 | 第118-119页 |
4.3.6 pH值对探针的影响 | 第119-120页 |
4.3.7 AQDA的识别机理与理论计算 | 第120-123页 |
4.3.8 细胞成像实验 | 第123-125页 |
4.4 本章小结 | 第125-126页 |
参考文献 | 第126-131页 |
第五章 基于荧光素的水合联氨探针的合成及其性能研究 | 第131-148页 |
5.1 引言 | 第131-132页 |
5.2 实验部分 | 第132-135页 |
5.2.1 合成所需要的试剂及原料 | 第132页 |
5.2.2 后续试剂及原料的来源 | 第132-133页 |
5.2.3 测试仪器 | 第133-134页 |
5.2.4 探针的合成 | 第134-135页 |
5.2.4.1 FLB的合成路线图以及识别机理 | 第134页 |
5.2.4.2 FLB的合成 | 第134-135页 |
5.2.5 紫外吸收与荧光光谱测试母液的配置 | 第135页 |
5.3 结果与讨论 | 第135-144页 |
5.3.1 探针FLB的裸眼识别 | 第135-136页 |
5.3.2 水合肼对FLB紫外—可见光谱的影响 | 第136-138页 |
5.3.3 水合肼对FLB的荧光滴定实验 | 第138-139页 |
5.3.4 FLB的选择性与竞争性实验 | 第139-140页 |
5.3.5 FLB的响应时间和pH值的影响 | 第140-141页 |
5.3.6 探针的识别机理 | 第141-142页 |
5.3.7 探针FLB的细胞毒性实验和细胞成像实验 | 第142-144页 |
5.4 本章小结 | 第144-145页 |
参考文献 | 第145-148页 |
附录 | 第148-156页 |
作者简介 | 第156-157页 |
博士学位期间发表的学术论文 | 第157-158页 |
致谢 | 第158页 |