| 摘要 | 第6-8页 |
| abstract | 第8-10页 |
| 第1章 绪论 | 第13-22页 |
| 1.1 抗凝血生物材料 | 第13-15页 |
| 1.1.1 凝血机制及血液相容性 | 第13页 |
| 1.1.2 生物材料表面抗凝改性方法 | 第13-15页 |
| 1.1.2.1 表面物理化学改性 | 第14页 |
| 1.1.2.2 表面生物化改性 | 第14-15页 |
| 1.2 生物信号分子-NO | 第15-18页 |
| 1.2.1 NO的来源和作用机制 | 第15-16页 |
| 1.2.2 NO在生物材料表面改性中的作用 | 第16-18页 |
| 1.2.2.1 NO释放型材料 | 第16-17页 |
| 1.2.2.2 NO产生型材料 | 第17-18页 |
| 1.3 手性分子与手性识别 | 第18-19页 |
| 1.4 手性分子在生物材料表面的应用 | 第19-20页 |
| 1.5 本论文研究目的与意义、主要研究内容及技术路线 | 第20-22页 |
| 1.5.1 本论文研究目的与意义 | 第20-21页 |
| 1.5.2 主要研究内容 | 第21页 |
| 1.5.3 技术路线 | 第21-22页 |
| 第2章 Ti-O表面构建不同手性酒石酸/钠及其表征 | 第22-35页 |
| 2.1 实验所需的主要仪器设备和试剂 | 第23页 |
| 2.2 样品的制备 | 第23-25页 |
| 2.2.1 制备Ti-O薄膜 | 第23-24页 |
| 2.2.2 制备聚多巴胺薄膜 | 第24页 |
| 2.2.3 在聚多巴胺薄膜接枝己二胺 | 第24页 |
| 2.2.4 接枝不同手性酒石酸(L-/D-TA) | 第24-25页 |
| 2.2.5 接枝不同手性酒石酸钠(L-/D-TA-NA) | 第25页 |
| 2.3 样品材料学表征 | 第25-27页 |
| 2.3.1 X射线衍射能谱 | 第25-26页 |
| 2.3.2 X射线光电子能谱 | 第26页 |
| 2.3.3 水接触角 | 第26页 |
| 2.3.4 QCM-D | 第26-27页 |
| 2.4 结果与分析 | 第27-33页 |
| 2.4.1 XRD结果与分析 | 第27-28页 |
| 2.4.2 XPS结果与分析 | 第28-29页 |
| 2.4.3 水接触角结果 | 第29-30页 |
| 2.4.4 QCM-D结果与分析 | 第30-33页 |
| 2.5 本章小结 | 第33-35页 |
| 第3章 固定不同手性酒石酸样品表面的血液相容性评价 | 第35-41页 |
| 3.1 血液相容性评价 | 第35-37页 |
| 3.1.1 纤维蛋白原变性检测 | 第35-36页 |
| 3.1.2 体外血小板粘附实验 | 第36-37页 |
| 3.2 结果与分析 | 第37-40页 |
| 3.2.1 纤维蛋白原变性检测结果与分析 | 第37-38页 |
| 3.2.2 血小板粘附与激活实验结果与分析 | 第38-40页 |
| 3.3 本章小结 | 第40-41页 |
| 第4章 固定不同手性酒石酸/双硒样品对催化释放NO的影响 | 第41-50页 |
| 4.1 样品的制备方法 | 第41-42页 |
| 4.2 材料学表征方法 | 第42页 |
| 4.3 NO体外催化释放实验 | 第42页 |
| 4.4 体外血小板粘附实验 | 第42-43页 |
| 4.5 结果与分析 | 第43-48页 |
| 4.5.1 XPS结果与分析 | 第43-44页 |
| 4.5.2 水接触角 | 第44-45页 |
| 4.5.3 NO体外催化释放实验结果与分析 | 第45-47页 |
| 4.5.4 血小板粘附与激活实验结果与分析 | 第47-48页 |
| 4.6 本章小结 | 第48-50页 |
| 第5章 表面手性对血小板粘附与激活行为影响的机理讨论 | 第50-53页 |
| 5.1 表面手性对纤维蛋白原粘附和变性行为的影响 | 第50-51页 |
| 5.2 表面手性对催化释放NO的影响 | 第51-53页 |
| 结论 | 第53-54页 |
| 存在的问题和展望 | 第54-55页 |
| 致谢 | 第55-56页 |
| 参考文献 | 第56-62页 |
| 攻读硕士学位期间发表学术论文及参加科研课题 | 第62页 |
