| 英文缩略词表 | 第7-10页 |
| 中文摘要 | 第10-12页 |
| 英文摘要 | 第12-13页 |
| 前言 | 第14-16页 |
| 一、间充质干细胞上清液对人光老化表皮细胞的修复再生作用 | 第16-34页 |
| 1. 材料 | 第16-19页 |
| 1.1 主要试剂 | 第16-17页 |
| 1.2 主要仪器 | 第17-18页 |
| 1.3 试剂配制 | 第18-19页 |
| 2. 方法 | 第19-23页 |
| 2.1 样本采集与处理 | 第19页 |
| 2.2 人绒毛膜干细胞的提取和培养 | 第19-20页 |
| 2.3 间充质干细胞特异性抗原表达的鉴定 | 第20页 |
| 2.4 人绒毛膜间充质干细胞上清液(CDSC-CNM)的收集 | 第20页 |
| 2.5 人永生化表皮细胞的培养 | 第20页 |
| 2.6 UVB辐射诱导光老化HaCaT细胞 | 第20页 |
| 2.7 CDSC-CNM作用于光老化表皮细胞 | 第20-21页 |
| 2.8 细胞增殖能力分析 | 第21页 |
| 2.9 细胞周期检测 | 第21页 |
| 2.10 细胞迁移实验 | 第21页 |
| 2.11 ROS生成量评估 | 第21-22页 |
| 2.12 碱性彗星分析DNA损伤程度 | 第22页 |
| 2.13 细胞因子检测 | 第22页 |
| 2.14 蛋白质印迹法检测相关通路蛋白表达水平 | 第22页 |
| 2.15 统计分析 | 第22-23页 |
| 3. 结果 | 第23-31页 |
| 3.1 CDSC细胞的表面抗原特征 | 第23-24页 |
| 3.2 光老化的HaCaT细胞增殖活力减低 | 第24页 |
| 3.3 CDSC-CNM提高光老化HaCaT细胞增殖率 | 第24-25页 |
| 3.4 CDSC-CNM调节光老化HaCaT细胞的细胞周期 | 第25-26页 |
| 3.5 CDSC-CNM增加光老化HaCaT细胞的细胞迁移率 | 第26-27页 |
| 3.6 CDSC-CNM增强光老化HaCaT细胞的抗氧化活性 | 第27-28页 |
| 3.7 CDSC-CNM减少光老化HaCaT细胞的DNA损伤 | 第28-29页 |
| 3.8 CDSC-CNM中细胞分泌因子的检测 | 第29-30页 |
| 3.9 CDSC-CNM提高光老化HaCaT细胞中Mcl-1和p-ERK1/2的蛋白表达水平 | 第30-31页 |
| 4. 讨论 | 第31-34页 |
| 二、皮肤汗腺再生过程中去分化源性表皮干细胞诱导为汗腺样细胞的DNA甲基化调控验证 | 第34-54页 |
| 1. 材料 | 第35-39页 |
| 1.1 主要试剂 | 第35-36页 |
| 1.2 主要仪器 | 第36-37页 |
| 1.3 试剂配制 | 第37-39页 |
| 2. 方法 | 第39-43页 |
| 2.1 去分化源性表皮干细胞的培养 | 第39页 |
| 2.2 Pax6真核表达载体构建 | 第39页 |
| 2.3 转染Pax6质粒并去甲基化 | 第39-40页 |
| 2.4 汗腺标志物的表达 | 第40页 |
| 2.5 裸鼠脚掌汗腺移植实验 | 第40-42页 |
| 2.6 汗腺样细胞移植安全性评价 | 第42-43页 |
| 2.7 统计分析 | 第43页 |
| 3. 结果 | 第43-50页 |
| 3.1 去分化诱导对细胞表型的改变 | 第43-44页 |
| 3.2 成功构建Pax6真核表达质粒 | 第44-46页 |
| 3.3 获得阳性克隆细胞 | 第46-47页 |
| 3.4 汗腺标志物的检测 | 第47-48页 |
| 3.5 汗腺样细胞促进裸鼠损伤汗腺的修复 | 第48-49页 |
| 3.6 汗腺样细胞移植安全性评价 | 第49-50页 |
| 4. 讨论 | 第50-54页 |
| 总结 | 第54-55页 |
| 参考文献 | 第55-60页 |
| 文献综述 | 第60-103页 |
| 文献综述一 | 第60-93页 |
| References | 第80-93页 |
| 文献综述二 | 第93-103页 |
| 参考文献 | 第100-103页 |
| 攻读博士学位期间发表文章及参与科研情况 | 第103-104页 |
| 致谢 | 第104页 |
