摘要 | 第3-4页 |
Abstract | 第4页 |
英文缩略词表 | 第5-9页 |
第一章 绪论 | 第9-19页 |
1.1 研究背景 | 第9-18页 |
1.1.1 急性肺损伤概述 | 第9-10页 |
1.1.2 血红素加氧酶-1概述 | 第10-14页 |
1.1.3 小窝蛋白-1概述 | 第14-16页 |
1.1.4 CSD多肽研究进展 | 第16页 |
1.1.5 Cav-1与HO-1共同作用 | 第16-17页 |
1.1.6 肺巨噬细胞与HO-1 | 第17-18页 |
1.2 本课题的研究目的及意义 | 第18页 |
1.3 本课题研究内容 | 第18-19页 |
第二章 CSD多肽对LPS诱导的原代肺泡巨噬细胞的抗炎作用 | 第19-40页 |
2.1 引言 | 第19页 |
2.2 实验材料 | 第19-21页 |
2.2.1 实验动物 | 第19页 |
2.2.2 实验多肽 | 第19-20页 |
2.2.3 材料及试剂 | 第20-21页 |
2.2.4 实验仪器 | 第21页 |
2.3 实验方法 | 第21-29页 |
2.3.1 生物信息学分析 | 第21-22页 |
2.3.2 原代AMs的分离纯化培养 | 第22页 |
2.3.3 原代AMs的给药 | 第22-23页 |
2.3.4 细胞免疫荧光检测Cav-1与HO-1的结合情况 | 第23-24页 |
2.3.5 HO-1活性检测 | 第24页 |
2.3.6 实时荧光定量PCR实验 | 第24-27页 |
2.3.7 细胞培养基中NO的含量检测 | 第27页 |
2.3.8 免疫共沉淀 | 第27-28页 |
2.3.9 蛋白印迹分析(Western Blot) | 第28-29页 |
2.3.10 统计学处理分析数据 | 第29页 |
2.4 结果与讨论 | 第29-39页 |
2.4.1 原代大鼠AMs的分离纯化 | 第29页 |
2.4.2 HO-1对LPS诱导的AMs炎症损伤的抗炎作用 | 第29-32页 |
2.4.3 多肽给药方式的确定 | 第32-33页 |
2.4.4 生物信息学分析CSD多肽与HO-1的结合作用 | 第33页 |
2.4.5 CSD多肽预处理对Cav-1及HO-1之间结合的影响 | 第33-34页 |
2.4.6 CSD多肽预处理对HO-1活性的影响 | 第34-35页 |
2.4.7 CSD多肽预处理对炎症因子表达的影响 | 第35-36页 |
2.4.8 CSD多肽预处理对巨噬细胞极化的影响 | 第36-37页 |
2.4.9 CSD多肽预处理对HO-1、Cav-1及IκB蛋白含量的影响 | 第37-38页 |
2.4.10 CSD多肽预处理对MAPK信号通路的影响 | 第38-39页 |
2.5 本章小结 | 第39-40页 |
第三章 野生型CSD多肽对LPS诱导的小鼠急性肺损伤保护作用的研究 | 第40-51页 |
3.1 引言 | 第40页 |
3.2 实验材料 | 第40-41页 |
3.2.1 实验动物 | 第40页 |
3.2.2 材料及试剂 | 第40-41页 |
3.2.3 实验仪器 | 第41页 |
3.3 实验方法 | 第41-45页 |
3.3.1 动物模型及实验分组 | 第41-42页 |
3.3.2 小鼠肺组织免疫荧光 | 第42-43页 |
3.3.3 HO-1活性检测 | 第43页 |
3.3.4 肺组织湿干重比测定 | 第43页 |
3.3.5 苏木素-伊红染色观察肺组织病理形态 | 第43-44页 |
3.3.6 肺泡灌洗液总细胞计数 | 第44页 |
3.3.7 小鼠血清中乳酸脱氢酶活性测定 | 第44页 |
3.3.8 小鼠肺组织实时荧光定量PCR | 第44-45页 |
3.3.9 统计学处理分析数据 | 第45页 |
3.4 结果与结论 | 第45-50页 |
3.4.1 WT CSD多肽预处理对小鼠肺组织中Cav-1与HO-1结合的影响 | 第45-46页 |
3.4.2 WT CSD多肽预处理对HO-1活性的影响 | 第46-47页 |
3.4.3 WT CSD多肽预处理对肺组织病理形态的影响 | 第47-48页 |
3.4.4 WT CSD多肽预处理对小鼠肺组织损伤程度的影响 | 第48-49页 |
3.4.5 WT CSD多肽预处理对小鼠炎症因子表达的影响 | 第49-50页 |
3.5 本章小结 | 第50-51页 |
主要结论与展望 | 第51-53页 |
致谢 | 第53-54页 |
参考文献 | 第54-58页 |
附录:作者在攻读硕士学位期间发表的论文及参与的课题 | 第58页 |