| 摘要 | 第4-5页 |
| ABSTRACT | 第5页 |
| 1 前言 | 第8-20页 |
| 1.1 裂殖壶菌 | 第8-9页 |
| 1.1.1 裂殖壶菌概述 | 第8页 |
| 1.1.2 裂殖壶菌研究背景 | 第8-9页 |
| 1.2 DHA生产菌发酵条件优化 | 第9-11页 |
| 1.2.1 培养基组分 | 第9-10页 |
| 1.2.2 培养条件 | 第10-11页 |
| 1.3 二十二碳六烯酸(DHA) | 第11-17页 |
| 1.3.1 DHA概述 | 第11-12页 |
| 1.3.2 DHA的生理功能 | 第12-14页 |
| 1.3.3 DHA的应用 | 第14-15页 |
| 1.3.4 DHA的提取及纯化方法 | 第15-17页 |
| 1.4 机体免疫系统简介 | 第17-18页 |
| 1.4.1 非特异性免疫 | 第17页 |
| 1.4.2 特异性免疫 | 第17-18页 |
| 1.5 本论文的研究目的及意义 | 第18页 |
| 1.6 本论文的主要研究内容 | 第18-20页 |
| 1.6.1 裂殖壶菌培养条件的优化 | 第18-19页 |
| 1.6.2 裂殖壶菌DHA的提取纯化 | 第19页 |
| 1.6.3 裂殖壶菌DHA的免疫活性研究 | 第19-20页 |
| 2 材料与方法 | 第20-30页 |
| 2.1 实验材料 | 第20-23页 |
| 2.1.1 原料及实验细胞 | 第20页 |
| 2.1.2 主要试剂 | 第20-21页 |
| 2.1.3 主要仪器与设备 | 第21-22页 |
| 2.1.4 主要溶液 | 第22-23页 |
| 2.2 实验方法 | 第23-30页 |
| 2.2.1 裂殖壶菌的培养及油脂含量的测定 | 第23-24页 |
| 2.2.2 培养条件单因素优化实验 | 第24-26页 |
| 2.2.3 裂殖壶菌DHA的提取及纯化 | 第26-27页 |
| 2.2.4 裂殖壶菌DHA的免疫活性研究 | 第27-30页 |
| 3 结果与讨论 | 第30-49页 |
| 3.1 裂殖壶菌的初步培养 | 第30-32页 |
| 3.1.1 裂殖壶菌的形态 | 第30页 |
| 3.1.2 磷酸香草醛法 | 第30-32页 |
| 3.2 裂殖壶菌培养条件优化 | 第32-38页 |
| 3.2.1 裂殖壶菌最佳接种量的确定 | 第32-33页 |
| 3.2.2 裂殖壶菌培养基最佳pH值的确定 | 第33-34页 |
| 3.2.3 培养基中葡萄糖最佳添加量的确定 | 第34-35页 |
| 3.2.4 培养基中蛋白胨最佳添加量的确定 | 第35页 |
| 3.2.5 培养基中海水晶最佳添加量的确定 | 第35-36页 |
| 3.2.6 培养基中VB1和D-生物素添加量的确定 | 第36-37页 |
| 3.2.7 培养基优化最终结果 | 第37-38页 |
| 3.3 裂殖壶菌DHA的提取及纯化 | 第38-41页 |
| 3.3.1 裂殖壶菌中DHA的提取 | 第38-40页 |
| 3.3.2 硝酸银-硅胶柱层析纯化DHA | 第40-41页 |
| 3.4 DHA的免疫活性研究 | 第41-49页 |
| 3.4.1 DHA对RAW264.7细胞增殖活性的影响 | 第41-42页 |
| 3.4.2 DHA对RAW264.7细胞吞噬能力的影响 | 第42-44页 |
| 3.4.3 细胞形态学观察 | 第44-46页 |
| 3.4.4 DHA对RAW264.7细胞酶活性的影响 | 第46-49页 |
| 4 结论 | 第49-50页 |
| 5 展望 | 第50-51页 |
| 6 参考文献 | 第51-58页 |
| 7 攻读硕士学位期间发表论文情况 | 第58-59页 |
| 8 致谢 | 第59页 |
