中文摘要 | 第1-17页 |
英文摘要 | 第17-29页 |
英文缩语列表 | 第29-30页 |
前言 | 第30-37页 |
技术路线图 | 第37-38页 |
第一章 PEG-多西他赛载药白蛋白纳米粒的制备及质量标准的研究 | 第38-56页 |
·材料与仪器 | 第38-40页 |
·材料 | 第38-39页 |
·仪器 | 第39-40页 |
·实验方法 | 第40-46页 |
·多西他赛白蛋白纳米粒(DANPs)的制备 | 第40页 |
·PEG化多西他赛白蛋白纳米粒(PEG-DANPs)的制备 | 第40-41页 |
·DANPs及PEG-DANPs质量标准的研究 | 第41-46页 |
·制剂粒径及电位的测定 | 第41页 |
·制剂显微形态的观察 | 第41页 |
·制剂的载药量和包封率 | 第41-42页 |
·标准曲线的建立 | 第41-42页 |
·载药量和包封率测定 | 第42页 |
·药物体外释放实验 | 第42-44页 |
·药物体外溶血实验 | 第44页 |
·药物体内药代动力学的研究 | 第44-46页 |
·给药方法与血样采集 | 第45页 |
·血浆样品检测 | 第45-46页 |
·药代动力学参数的计算 | 第46页 |
·实验结果 | 第46-55页 |
·PEG-DANPs碘染色及考马斯亮蓝染色结果 | 第46-47页 |
·DANPs及PEG-DANPs的制备 | 第47-48页 |
·DANPs及PEG-DANPs粒径的测定结果 | 第48-50页 |
·DANPs及PEG-DANPs的电镜下显微形 | 第50-51页 |
·DANPs及PEG-DANPs的载药量和包封率 | 第51-53页 |
·DTX标准曲线的建立 | 第51-52页 |
·制剂载药量和包封率测定 | 第52-53页 |
·DANPs及PEG-DANPs体外释放实验 | 第53页 |
·体外溶血实验 | 第53-55页 |
·本章小结 | 第55-56页 |
第二章 PEG化多西他赛纳白蛋白米粒抑制A549小鼠肺癌细胞体增殖和诱导凋亡的研究 | 第56-68页 |
·材料与仪器 | 第56-57页 |
·材料 | 第56页 |
·仪器 | 第56-57页 |
·实验方法 | 第57-61页 |
·A549细胞的培养 | 第57-59页 |
·A549细胞复苏 | 第57-58页 |
·细胞传代 | 第58页 |
·细胞冻存 | 第58-59页 |
·A549细胞增殖抑制实验 | 第59页 |
·噻唑蓝(MTT)溶液的配制 | 第59页 |
·A549细胞铺板 | 第59页 |
·流式细胞仪检测药物对A549肿瘤细胞凋亡的影响 | 第59-60页 |
·激光共聚焦显微镜观察入胞情况 | 第60-61页 |
·实验结果 | 第61-65页 |
·A549细胞增殖抑制实验 | 第61-63页 |
·流式细胞仪检测各组药物对肺癌A549细胞凋亡的影响 | 第63-64页 |
·激光共聚焦显微镜观察入胞情况 | 第64-65页 |
·讨论 | 第65-67页 |
·本章小结 | 第67-68页 |
第三章 DANPs和PEG-DANPs体内抗肺癌作用研究 | 第68-82页 |
·材料与仪器 | 第68-69页 |
·材料 | 第68页 |
·仪器 | 第68-69页 |
·实验方法 | 第69-71页 |
·建立动物模型 | 第69-71页 |
·A549皮下移植瘤模型的制备 | 第69页 |
·PEG-DANPs对裸鼠A549细胞皮下移植瘤的抑制作用 | 第69页 |
·裸鼠A549细胞肺原位移植瘤模型建立 | 第69-70页 |
·PEG-DANPs对裸鼠A549细胞原位瘤的抑制作用 | 第70-71页 |
·实验结果 | 第71-80页 |
·A549肺癌细胞显微镜下图像 | 第71-72页 |
·裸鼠皮下移植瘤及原位瘤外观图 | 第72-77页 |
·裸鼠的体重变化 | 第77-78页 |
·裸鼠的瘤块体积变化 | 第78-79页 |
·组织病理学评价结果 | 第79-80页 |
·讨论 | 第80-81页 |
·本章小结 | 第81-82页 |
第四章 全文总结与展望 | 第82-83页 |
·全文总结 | 第82页 |
·展望 | 第82-83页 |
参考文献 | 第83-89页 |
致谢 | 第89-91页 |
综述 | 第91-112页 |
参考文献 | 第107-112页 |
附录 攻读学位期间发表论文目录 | 第112页 |