| 摘要 | 第1-6页 |
| Abstract | 第6-11页 |
| 1 绪论 | 第11-23页 |
| ·褐藻多糖硫酸酯的研究概况 | 第11-18页 |
| ·褐藻多糖硫酸酯的制备方法及化学组成 | 第11-15页 |
| ·褐藻多糖硫酸酯的提取 | 第11-12页 |
| ·褐藻多糖硫酸酯的降解 | 第12-13页 |
| ·褐藻多糖硫酸酯的分级纯化 | 第13-14页 |
| ·褐藻多糖硫酸酯的化学组成 | 第14-15页 |
| ·褐藻多糖硫酸酯的主要生物活性 | 第15-18页 |
| ·褐藻多糖硫酸酯的抗凝血活性 | 第15-16页 |
| ·褐藻多糖硫酸酯的抗氧化活性 | 第16页 |
| ·褐藻多糖硫酸酯的免疫调节活性 | 第16-17页 |
| ·褐藻多糖硫酸酯的抗肿瘤活性 | 第17页 |
| ·褐藻多糖硫酸酯的抗病毒活性 | 第17页 |
| ·褐藻多糖硫酸酯的抗肾衰活性 | 第17-18页 |
| ·肾功能衰竭的发病机制及治疗方法 | 第18-20页 |
| ·CRF 的分子基础 | 第18-19页 |
| ·CRF 中的信号转导 | 第19页 |
| ·CRF 的治疗方法 | 第19-20页 |
| ·褐藻多糖硫酸酯抗肾衰活性及机制的研究进展 | 第20-23页 |
| ·褐藻多糖硫酸酯抗肾衰活性的研究概况 | 第20页 |
| ·褐藻多糖硫酸酯抗肾衰机制的研究进展 | 第20-23页 |
| ·褐藻多糖硫酸酯与相关蛋白结合 | 第21页 |
| ·褐藻多糖硫酸酯调节相关细胞因子 | 第21页 |
| ·褐藻多糖硫酸酯抑制细胞凋亡 | 第21-23页 |
| 2 五种海带褐藻多糖硫酸酯的制备及化学组成的研究 | 第23-31页 |
| ·实验材料 | 第23-24页 |
| ·原料 | 第23页 |
| ·主要试剂 | 第23-24页 |
| ·主要仪器设备 | 第24页 |
| ·实验方法 | 第24-28页 |
| ·褐藻多糖硫酸酯的制备 | 第24-25页 |
| ·酸提法提取褐藻多糖硫酸酯 | 第24页 |
| ·水提法提取褐藻多糖硫酸酯 | 第24-25页 |
| ·抗坏血酸—H2O2法降解褐藻多糖硫酸酯 A 和 B | 第25页 |
| ·褐藻多糖硫酸酯 DA 的分级纯化 | 第25页 |
| ·褐藻多糖硫酸酯的化学组成分析 | 第25-28页 |
| ·分子量测定—高效凝胶过滤色谱法（HPGPC） | 第25-26页 |
| ·总糖含量测定—苯酚硫酸法[59] | 第26页 |
| ·岩藻糖含量测定—半胱氨酸盐酸盐法[60] | 第26页 |
| ·糖醛酸含量测定—咔唑比色法[61] | 第26-27页 |
| ·硫酸根含量测定—明胶氯化钡法[62] | 第27页 |
| ·单糖组成测定—柱前衍生高效液相色谱法（PMP-HPLC）[63] | 第27-28页 |
| ·结果与讨论 | 第28-30页 |
| ·褐藻多糖硫酸酯的样品总结 | 第28-29页 |
| ·褐藻多糖硫酸酯的化学组成分析 | 第29-30页 |
| ·本章小结 | 第30-31页 |
| 3 PMP-HPLC 法检测尾静脉注射后小鼠中褐藻多糖硫酸酯的分布 | 第31-41页 |
| ·实验材料 | 第31-32页 |
| ·实验动物及样品 | 第31页 |
| ·实验试剂 | 第31页 |
| ·主要仪器设备 | 第31-32页 |
| ·实验方法 | 第32-35页 |
| ·溶液配制 | 第32-33页 |
| ·静脉注射褐藻多糖硫酸酯检测小鼠体内岩藻糖的分布 | 第33-34页 |
| ·动物实验 | 第33页 |
| ·样品的处理 | 第33页 |
| ·PMP-HPLC 法检测样品中的岩藻糖的含量 | 第33-34页 |
| ·静脉注射不同浓度褐藻多糖硫酸酯检测小鼠肾脏内岩藻糖含量 | 第34-35页 |
| ·动物实验 | 第34页 |
| ·样品的处理 | 第34页 |
| ·PMP-HPLC 法检测样品中的岩藻糖含量 | 第34-35页 |
| ·结果与讨论 | 第35-39页 |
| ·静脉注射褐藻多糖硫酸酯检测小鼠体内岩藻糖的分布 | 第35-38页 |
| ·静脉注射褐藻多糖硫酸酯检测小鼠肾脏内岩藻糖含量 | 第38-39页 |
| ·本章小结 | 第39-41页 |
| 4 褐藻多糖硫酸酯对 LPS 诱导大鼠肾小球系膜细胞 NO 及 TGF-β1 产生量的影响 | 第41-55页 |
| ·实验材料 | 第41-42页 |
| ·实验细胞及样品 | 第41页 |
| ·实验试剂 | 第41-42页 |
| ·主要仪器设备 | 第42页 |
| ·实验方法 | 第42-47页 |
| ·HBZY-1 细胞的培养 | 第42-43页 |
| ·HBZY-1 细胞培养条件 | 第42页 |
| ·细胞传代 | 第42-43页 |
| ·细胞冻存 | 第43页 |
| ·细胞复苏 | 第43页 |
| ·褐藻多糖硫酸酯对 LPS 诱导 HBZY-1 细胞活力的影响 | 第43-44页 |
| ·褐藻多糖硫酸酯对 LPS 诱导 HBZY-1 NO 产生量的影响 | 第44-45页 |
| ·细胞的培养及处理 | 第44页 |
| ·细胞培养液中 NO 的检测-Griess 法 | 第44-45页 |
| ·褐藻多糖硫酸酯对 LPS 诱导 HBZY-1 TGF-β1 产生量的影响 | 第45-47页 |
| ·细胞的培养及处理 | 第45页 |
| ·细胞的裂解 | 第45-46页 |
| ·ELISA 测定方法 | 第46-47页 |
| ·数据处理 | 第47页 |
| ·结果与讨论 | 第47-54页 |
| ·HBZY-1 细胞的培养 | 第47页 |
| ·褐藻多糖硫酸酯对 LPS 诱导 HBZY-1 细胞活力的影响 | 第47-48页 |
| ·褐藻多糖硫酸酯对 LPS 诱导 HBZY-1 NO 产生量的影响 | 第48-52页 |
| ·褐藻多糖硫酸酯对 LPS 诱导 HBZY-1 TGF-β1 产生量的影响 | 第52-54页 |
| ·本章小结 | 第54-55页 |
| 5 免疫组化法检测褐藻多糖硫酸酯对肾衰大鼠肾脏中乙酰肝素酶含量的影响 | 第55-63页 |
| ·实验材料 | 第55-56页 |
| ·实验动物及样品 | 第55页 |
| ·实验试剂 | 第55-56页 |
| ·实验仪器及耗材 | 第56页 |
| ·实验方法 | 第56-58页 |
| ·动物模型及分组 | 第56页 |
| ·药物配制及给药方式 | 第56-57页 |
| ·常规检测指标及检测方法 | 第57页 |
| ·大鼠肾脏中乙酰肝素酶含量的检测 | 第57-58页 |
| ·数据处理 | 第58页 |
| ·结果与讨论 | 第58-62页 |
| ·常规指标检测结果 | 第58-60页 |
| ·大鼠肾脏中乙酰肝素酶含量的检测结果 | 第60-62页 |
| ·本章小结 | 第62-63页 |
| 6 结论与创新点 | 第63-66页 |
| ·本文主要结论 | 第63-65页 |
| ·本文主要创新点 | 第65-66页 |
| 参考文献 | 第66-72页 |
| 附录 1 英文缩写对照表 | 第72-75页 |
| 附录 2 作者简介及发表文章目录 | 第75-77页 |
| 致谢 | 第77页 |
